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Larvas desconocidas en capullo gris

Larvas desconocidas en capullo gris



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Ubicación: Alemania

Mientras limpiaba las ventanas hoy, me di cuenta de que algo de suciedad se caía de la parte superior del marco de la ventana. Al mirar más allá, parecía ser una especie de capullo. (La primera foto es muy mala, lo siento)

Esos capullos tenían unos 2-3 cm de largo. Había un total de 6 capullos. Dos resultaron dañados al caer.

Creo que la última imagen muestra la parte interior de la segunda imagen. Las larvas (?) Tenían aproximadamente 0,8 cm a 1 cm de largo.

No estoy seguro de si importa, pero la ventana es una ventana del ático, ubicada en el tercer piso. ¿Tienes idea de qué tipo de larva es?


Este es un neófito que se ha registrado en Europa desde 1979:

Sceliphron curvatum, en alemán también conocido como orientalische Mörtelwespe. Inusualmente grande considerando lo que está zumbando alrededor, pero en su mayoría inofensivo.

Los nidos, o más bien las células de las larvas individuales, están hechos de barro y, si bien hay una treintena de especies en el género, solo Sceliphron curvatum se encuentra en Alemania: no hay ninguna otra avispa u otro insecto en Alemania que construya celdas de nido similares, especialmente el tamaño es un buen indicador. Su descripción de la ubicación del nido en el marco de una ventana es típica, pliegues de cortina o rincones (verticales) en muebles, p. Ej. los estantes también son bienvenidos. Nuestro espécimen eligió un escondite detrás de algunos libros hace unos años.

Debido a su tamaño, por lo general hay algunos artículos sobre ellos en la pausa de los medios de comunicación de verano, que describen a ciudadanos desconcertados y su “descubrimiento”. Algunas descripciones menos sensacionales, fotos e información adicional se pueden encontrar aquí (lo siento, en alemán).

¡Buen hallazgo!


Ciclo vital

La polilla gitana tiene cuatro etapas de desarrollo distintas: huevo, larva, pupa y adulto. Cada etapa de la vida se ve y se comporta de manera muy diferente a las otras etapas. Los huevos y las pupas parecen sin vida, pero experimentan cambios dramáticos internamente. Las larvas comen y acumulan grasa que se usa cuando son adultas para encontrar pareja y reproducirse.

Huevos: la etapa de hibernación

Los huevos se ponen en agosto y el embrión comienza a desarrollarse inmediatamente durante los cálidos días de verano. En un mes, la pequeña larva está completamente formada y lista para eclosionar. En este punto, sin embargo, la larva entra en diapausa, interrumpiendo las actividades metabólicas y volviéndose insensible al frío. En animación suspendida, la larva pasa el invierno dentro del huevo. A medida que aumentan las temperaturas a principios de la primavera, la larva dentro del huevo se vuelve más activa lentamente. A mediados de mayo, justo cuando las hojas de los árboles se expanden, la larva mastica la cáscara del huevo y eclosiona.

Crédito de la foto: B. Queen, Departamento de Recursos Naturales de WI

Masa de huevos de polilla gitana en tronco de árbol

La larva (oruga): una máquina de alimentación

Antes de comenzar a alimentarse, las larvas u orugas, como se las conoce comúnmente, se dispersan por el bosque en un comportamiento llamado hinchamiento. La larva trepa a la copa del árbol en el que eclosionó y cuelga en el aire de un hilo de seda. Cuando una brisa atrapa a la larva, el hilo se rompe y es transportado por el viento hasta 150 yardas.

Una vez que la larva ha terminado de hincharse, comienza a alimentarse. Comerá durante cinco a seis semanas dependiendo de su sexo. Las hembras se alimentan durante una semana más para obtener la grasa necesaria para producir huevos. Aproximadamente una vez a la semana, la larva crecerá demasiado para su exoesqueleto y mudará. Los exoesqueletos sobrantes pueden agravar las alergias en algunas personas. Las mudas separan el período larvario en cinco o seis estadios, llamados estadios. Al principio del desarrollo larvario, estadíos uno al tres, las larvas se alimentan durante el día. Sin embargo, una vez que alcanzan el cuarto estadio, comienzan a alimentarse por la noche y bajan para esconderse debajo de la corteza áspera o en la hojarasca durante el día, posiblemente para evitar ser devorados por las aves. Las larvas de la polilla gitana adquieren su aspecto característico con los puntos azules y rojos en la espalda aproximadamente al final del primer estadio. Antes de eso, se ven bastante negros. Aproximadamente el 90% de las hojas consumidas por una larva se comerán en los dos últimos estadios. ¡Esta es la razón por la que a veces parece que los árboles se defolian de la noche a la mañana!

Crédito de la foto: Bill McNee, Departamento de Recursos Naturales de Wisconsin

La pupa: la etapa de transformación

Cuando la larva está completamente desarrollada (aproximadamente 1-1 / 2 pulgadas para los machos y 2-1 / 2 pulgadas para las hembras), comienza a deambular, buscando un lugar seguro para pupar. Buscan un lugar protegido donde estarán a salvo de enemigos como ratones, pájaros y avispas parásitas. Los escondites típicos incluyen entre las crestas de la corteza, debajo de las solapas de la corteza suelta o en las grietas de los afloramientos rocosos. También se pueden encontrar en grietas en la parte inferior de los vehículos, en las pilas de leña, en la parte inferior de las ramas de los árboles o en muebles de exterior y juegos.

Una vez que la larva ha encontrado un lugar seguro, muda su piel y su nueva piel se endurece hasta convertirse en una cáscara de color marrón oscuro. La polilla gitana permanece inmóvil durante la mayor parte de la etapa de pupa, mientras que todo su cuerpo se reordena dentro del caparazón de la pupa. Después de una semana o dos, la oruga parecida a un gusano se ha transformado en la polilla adulta alada que luego se libera del caparazón de la pupa.

Crédito de la foto: Milan Zubrik, Instituto de Investigación Forestal y # 8211 Eslovaquia, Imagen 1370017. Forestryimages.org

La polilla adulta: viven para reproducirse

La polilla gitana machos y hembras adultas se ven muy diferentes entre sí. Las hembras miden 1 1/2 pulgadas de largo y son blancas con una marca negra en forma de "v" en sus alas anteriores. Las polillas hembras no pueden volar y caerán al suelo si las recogen. Las polillas gitanas macho son moteadas de color marrón y gris y tienen antenas grandes y plumosas. Son similares en apariencia a muchas polillas nativas. Sin embargo, se pueden distinguir por su comportamiento, ya que vuelan en busca de hembras al final de la tarde, no por la noche.

La única función de la etapa adulta de la polilla gitana es reproducirse. A diferencia de muchas otras polillas y mariposas, la polilla gitana adulta no puede alimentarse. Tienen alrededor de 2 semanas para encontrar pareja antes de morir. Una vez que el macho ha encontrado a la hembra, se aparean y la hembra pone todos sus huevos en una sola masa en forma de lágrima de 1 a 1,5 pulgadas de largo y la cubre con pelos de color marrón amarillento de su propio cuerpo. Cada hembra pone solo una masa de huevos y cada masa de huevos puede contener hasta 600-1000 huevos.


Larvas desconocidas en capullo gris - Biología

Polilla de seda grande que se ve en Oregon desde mediados de julio hasta agosto. La envergadura del ala puede ser asombrosa de 4 a 6 pulgadas.

Prionus sp. & quot Escarabajos Prionus & quot

Escarabajos grandes que pueden ser tan grandes o más grandes que su pulgar. Como gusanos, estos escarabajos se alimentan de las raíces de árboles y arbustos. Para obtener más información sobre estos escarabajos, haga clic aquí.

Monochamus sp. & quotEscarabajos Sawyer & quot

Estos escarabajos nativos se confunden comúnmente con el escarabajo asiático de cuernos largos (ALB). Si ve uno de estos escarabajos y no está seguro de si es una de nuestras especies nativas o el ALB, envíelo a la clínica para su identificación.

Buprestis aurulenta & quot El Buprestid dorado & quot

Este llamativo insecto que perfora la madera se encuentra comúnmente en las flores que se alimentan de polen. El escarabajo inmaduro se alimenta bajo la corteza del pino Ponderosa y el abeto Douglas. Para obtener más información, visite la página de plagas forestales de la Universidad de Columbia Británica.

Noctua pronuba & quotGrandes alas amarillas & quot

Aunque se le llama & quot; amarillo debajo del ala & quot; el bajo ala de esta polilla es típicamente de un naranja brillante. La oruga de esta polilla se conoce comúnmente como gusano cortador y es una plaga común del tomate, la papa, la zanahoria, la fresa, la uva, la cebolla, la espinaca, la mostaza y la hierba.

Plodia interpunctella & quot; Polilla india de la harina & quot


Esta plaga es común en el hogar alimentándose de granos, comida para mascotas y cereal seco. Esta plaga a menudo pasa desapercibida hasta que las larvas terminan de alimentarse y se alejan para convertirse en crisálidas. Los capullos de esta polilla parecen pequeños sacos de huevos de araña en forma de cigarro y se encuentran comúnmente en las esquinas y grietas.

Anthrenus verbasci & quot Escarabajo de alfombra variado & quot

Esta es una plaga doméstica común que puede alimentarse de prácticamente cualquier cosa, como pegamento, papel, fibras de alfombras, granos almacenados, comida para mascotas y polen. La imagen de la derecha es la larva, la pupa y la piel de larva vacía.

Para obtener más información sobre esta plaga y otros escarabajos derméstidos, visite

Paracotalpa granicollis "Ositos"

Esta especie se encuentra comúnmente en primavera alimentándose de flores de manzano y hojas de melocotoneros. Desafortunadamente, se desconocen los hábitos alimenticios de la larva, sin embargo, algunos sugieren que puede alimentarse de las raíces de los pastos nativos.

Altica ambiens "Escarabajo pulga de aliso"

Esta plaga se alimenta de las hojas del aliso tanto en la edad adulta como en la inmadura. Las larvas esqueletizan las hojas (comiendo el tejido de la hoja pero dejando todas las venas, lo que da como resultado una apariencia de encaje) mientras que los adultos se alimentan de agujeros de bala (devorando círculos pequeños a medianos de material foliar). Los adultos hibernan en la base del árbol y emergen en la primavera para alimentarse y poner huevos. Las larvas están presentes desde finales de la primavera hasta finales del verano.

Centrodera spurca "Barrenador del abeto de Douglas"

Este es un escarabajo de cuernos largos común en el oeste que se alimenta bajo la corteza del abeto de Douglas como larva. Las manchas negras a los lados del escarabajo lo distinguen de algunas de las otras especies que se encuentran en Oregon.

Rosalia funebris "Barrenador de aliso con bandas"

Este es un escarabajo de cuernos largos que se encuentra comúnmente en todo el oeste. Las larvas se alimentan en los troncos de muertos de arce, aliso, fresno, sicomoro, roble y sauce. Los adultos emergen a mediados del verano y a menudo son encontrados por los propietarios de viviendas. Tenga en cuenta que las áreas de color claro de este escarabajo pueden variar de un blanco brillante a un azul pálido.

Lygus hesperus "Error de Lygus occidental"

Esta es una plaga común que se encuentra durante el verano. Se alimenta de una gran variedad de plantas, incluidas varias de importancia agrícola. El corazón de color crema en la parte posterior del insecto es un buen (pero no absoluto) identificador de esta especie.

Calligrapha multipunctata bigsbyana & quotEscarabajo de la hoja & quot

Este escarabajo es una plaga común que se alimenta de hojas de sauce como adulto y larva. Esta plaga es común en el huerto urbano donde se alimenta de sauces ornamentales.

Gluphisia severa & quot Guijarro con bandas & quot

Esta polilla es una de las primeras en emerger en primavera y se puede encontrar comúnmente en los semáforos a partir de mayo. Como oruga, se alimenta de abedules, cerezos, sauces y álamos, sin embargo, rara vez causa suficiente daño para ser notado.

Phyllodesma americana & quotLa polilla orejera americana & quot

Esta polilla se alimenta comúnmente de robles, álamos, álamos y sauces. La oruga de esta especie es un comedero solitario que rara vez causa suficiente daño para llamar la atención.

Ctenicera lobata "Haga clic en Escarabajo"

Se trata de una plaga de importancia económica en Columbia Británica en cultivos de cereales, cereales, hortalizas y pastos.


Detección y encuesta

Las larvas se pueden encontrar al tamizar material orgánico seco en los huecos de los árboles, especialmente en Quercus virginiana Molino. Los adultos se pueden recolectar por la noche en las luces y se pueden encontrar en los bosques golpeando las plantas.

Las hormigas león adultas se distinguen de todos los demás insectos por las cuatro alas membranosas de forma similar con una célula hipostigmática larga. Los machos de la mayoría de las especies tienen un órgano peculiar y único en la base del ala trasera (pilula axillaris). El abdomen en forma de tubo es similar en ambos sexos, aunque normalmente más largo en el macho, con el primer esternito reducido. Los terminales masculinos a menudo tienen un lóbulo posventral, mientras que los terminales femeninos tienen una estructura más variable probablemente relacionada con los sitios de oviposición, pero generalmente con setas excavadoras y un proceso similar a un dedo (gonapófisis posterior). Los adultos se confunden comúnmente con los caballitos del diablo (Odonata), pero las antenas clavadas de las hormigas león los distinguen fácilmente (Stange 1980a).


Crisopa verde - Chrysoperla rufilabris

La crisopa verde (científicamente conocida como Chrysoperla rufilabris) se usa ampliamente en diversas situaciones para controlar muchas plagas diferentes. Muchas especies de crisopas adultas no matan insectos plaga, en realidad subsisten con alimentos como néctar, polen y melaza. Son sus depredadores descendientes los que hacen el trabajo. Si está buscando un control eficaz de los pulgones, la larva de crisopa verde debería ayudarlo.

La crisopa adulta pone sus huevos en el follaje, donde cada huevo está adherido a la parte superior de un filamento similar a un cabello. Después de unos días, los huevos eclosionan y una pequeña larva depredadora emerge lista para comer algunas plagas de pulgones.

Las larvas de crisopa son pequeñas cuando emergen del huevo, pero crecen hasta 3/8 de pulgada de largo. Se les conoce como leones pulgón porque atacan vorazmente a los pulgones agarrándolos con grandes mandíbulas chupadoras e inyectando un veneno paralizante. Las mandíbulas huecas luego extraen los fluidos corporales de la plaga, matándola. De todos los depredadores comerciales disponibles, esta crisopa es la más voraz y tiene la mayor versatilidad para el control de pulgones en cultivos de campo, huertos e invernaderos.

Cada larva de crisopa verde devorará 200 o más plagas o huevos de plagas a la semana durante su período de desarrollo de dos a tres semanas. Después de esta etapa, las larvas pupan haciendo girar un capullo con hilo de seda. Aproximadamente cinco días después, las crisopas adultas emergen para aparearse y repetir el ciclo de vida. Dependiendo de las condiciones climáticas, el adulto vivirá de cuatro a seis semanas.

Cada hembra adulta puede depositar más de 200 huevos. Para obtener los mejores resultados, los hábitats deben alentar a los adultos a permanecer y reproducirse en el área de liberación. El néctar, el polen y la melaza estimulan su proceso reproductivo. Si estas fuentes de alimentos no están disponibles, los adultos pueden dispersarse. Una dieta artificial llamada Wheast está disponible para proporcionar a los adultos la nutrición necesaria que necesitan para la reproducción. En Beneficial Insectario se usa polvo de trigo mezclado con azúcar y agua para ayudar a criar la crisopa en masa. Los estudios realizados por universidades y el USDA han demostrado que rociar cultivos de campo con una mezcla de trigo / azúcar / agua aumenta considerablemente la puesta de huevos. Los adultos de crisopa verde pueden sobrevivir al invierno en lugares protegidos, pero tienen dificultades para sobrevivir a los fríos inviernos.

Las crisopas verdes están disponibles en las siguientes etapas de vida:

Adultos: Los adultos de Green Lacewing se venden en envases de 100, 250 o 1.000 y deben ser liberados el día de su recepción. Si la liberación inmediata no es posible, humedezca la esponja adjunta en agua y reemplácela. No recomendamos refrigerar a los adultos. Una crisopa hembra adulta puede depositar hasta 800 huevos en su vida útil de cuatro a seis semanas. El hábitat y la comida adecuados alentarán a los adultos a permanecer en el área, continuando con el ciclo de vida de Mejor manejo de plagas. Para liberar, retire la pantalla superior y use un trozo de cartón para regular las cantidades liberadas en toda el área objetivo.

Larvas: Las larvas de crisopa se venden en botellas de marcos de cría hexcel de 1000 o 6 & # 2158 pulgadas que contienen al menos 400 larvas. Ambos recipientes tienen un suministro limitado de alimentos, por lo que las larvas deben usarse lo antes posible. Las larvas de crisopa son seguras para humanos y animales, pero atacan vigorosamente a sus presas. Son ideales para el control de pulgones, ya que cada larva de crisopa puede devorar 200 o más plagas o huevos de plagas durante la etapa larvaria de dos a tres semanas.


Larvas desconocidas en capullo gris - Biología

La dobsonfly del este, Corydalus cornutus (Linnaeus), es uno de nuestros insectos no lepidópteros más grandes. Sus larvas, conocidas como hellgrammitas, son los principales depredadores invertebrados en los arroyos rocosos donde ocurren. Los machos adultos de la mosca dobson son particularmente espectaculares debido a sus grandes mandíbulas en forma de hoz (mandíbulas). Hay un total de treinta especies de Corydalus (Contreras-Ramos 1997), principalmente de América del Sur. Además de la dobsonfly del este, Corydalus cornutus, hay tres dobsonflies del género Corydalus en el oeste de los EE. UU. Para simplificar, el término & quot; dobsonfly & quot; en el resto de esta publicación se referirá a la dobsonfly del este, Corydalus cornutus.

Figura 1. Dobsonflies del este machos y hembras, Corydalus cornutus (Linnaeus), mostrando diferencias en mandíbulas y antenas. Fotografía de Lyle J. Buss, Universidad de Florida.

Distribución (volver al principio)

La mosca dobson se encuentra en la mayor parte del este de América del Norte al este de la División Continental desde Canadá hasta México cerca de arroyos que brindan hábitat para sus larvas.

Descripción (volver al principio)

Huevos: Los huevos de la mosca dobson son grises, cilíndricos y un poco menos de 1,5 mm de largo y 0,5 mm de ancho. Se ponen en racimos (de unos 2 cm de diámetro) con un promedio de aproximadamente 1.000 huevos / racimo (Baker y Neunzig 1968, Mangan 1992.). Los huevos están dispuestos en tres capas y la masa de huevos se cubre con un líquido transparente mediante un movimiento de cepillado de la punta del abdomen de la hembra. El líquido transparente se seca y adquiere un color blanco. Superficialmente, las masas de huevos se asemejan a grandes excrementos de pájaros.

Figura 2. Dobsonfly del este, Corydalus cornutus (Linnaeus), masa de huevos que muestra & quot; pinceladas & quot de capa blanca. Fotografía de D.W. Hall, Universidad de Florida.

Larva: Las larvas de la mosca Dobson (75 a 90 mm de longitud) son de color marrón claro y oscurecidas por una cubierta de microespinas de color marrón oscuro (Neunzig y Baker 1991). Los segmentos torácicos están cubiertos con tergitos negros endurecidos (placas dorsales).

Los segmentos abdominales 1 a 8 tienen filamentos táctiles laterales que funcionan para protegerlos entre sí y de otros pequeños depredadores (Neunzig y Baker 1991), y los segmentos 1 a 7 tienen cada uno un par de mechones ventrolaterales de branquias traqueales que absorben oxígeno disuelto (Barclay et al. 2005, Hoover et al. 1988). Además de las branquias traqueales, las larvas también tienen espiráculos que les permiten respirar tanto dentro como fuera del agua. Hay dos prolegs en la punta del abdomen, cada uno con un filamento dorsal y un par de ganchos terminales para ayudar a las larvas a anclarse al sustrato. Las mandíbulas son poderosas y muy esclerotizadas.

Figura 3. Larva de la mosca dobson del este, Corydalus cornutus (Linneo). Fotografía de J.F. Butler, Universidad de Florida.

Pupas: Las pupas de la mosca dobson son exactas (las alas, patas, antenas y piezas bucales en desarrollo están unidas solo en sus extremos proximales) y de coloración amarillo-naranja con manchas más oscuras en el dorso del abdomen. Están cubiertos de diminutas setas. Las pupas macho tienen un pequeño tubérculo en el esternón del protórax y tienen mandíbulas ligeramente más grandes y cápsulas de cabeza más anchas que las hembras (Mangan 1994), pero las mandíbulas de los sexos no son marcadamente dimórficas como en los adultos. Parfin (1952) informó que las largas mandíbulas del macho están dobladas como un acordeón en el exoesqueleto de la pupa.

Figura 4. Pupa de la mosca dobson del este. Corydalus cornutus (Linneo). Fotografía de D.W. Hall, Universidad de Florida.

Adultos: Las moscas dobson adultas son insectos grandes, de 100 a 140 mm (Arnett 2000), con alas grandes de las que se deriva el nombre de orden Megaloptera (ala grande). La hembra tiene mandíbulas cortas y poderosas similares en tamaño a las de la larva y es capaz de extraer sangre con su mordida. El macho tiene mandíbulas largas en forma de hoz (hasta 40 mm de longitud) y es incapaz de infligir una mordedura dolorosa.

Figura 5. Dobsonfly oriental hembra adulta, Corydalus cornutus (Linneo). Fotografía de Lyle J. Buss, Universidad de Florida.

Figura 6. Dobsonfly oriental macho adulto, Corydalus cornutus (Linneo). Fotografía de Lyle J. Buss, Universidad de Florida.

Figura 7. Dobsonfly oriental macho adulto, Corydalus cornutus (Linneo), con las alas extendidas. Fotografía de Lyle J. Buss, Universidad de Florida.

Ciclo de vida y biología (volver arriba)

Los huevos de la mosca dobson eclosionan en 1 a 2 semanas y siempre por la noche. Las hellgrammitas recién nacidas a menudo son impulsadas por una burbuja de aire y flotan o nadan hasta llegar a un sitio adecuado para el desarrollo larvario, la mayoría de las veces una parte del arroyo que fluye rápidamente con un fondo rocoso.

Figura 8. Dobsonfly del este, Corydalus cornutus (Linnaeus), hábitat de hellgrammite - Río Santa Fe (estación seca), Condado de Alachua, Florida. Fotografía de D.W. Hall, Universidad de Florida.

Los hellgrammitas viven debajo de piedras u ocasionalmente en enganches donde se alimentan de una variedad de insectos de cuerpo blando (a menudo inmaduros de moscas muertas y negras) (McCafferty y Provonsha 1983). En cautiverio, se alimentan de larvas de jejenes o de alimentos comerciales para peces de acuario, como gusanos tubifex liofilizados o copos de alimento para peces (Hoover et al 1988). Los helgrammitas mudan (mudan sus exoesqueletos) de 10 a 12 veces y requieren de uno a tres años para completar su desarrollo.

Cuando están listos para pupar, los hellgrammitas abandonan el agua y pueden pupar cerca del agua o viajar hasta 15 metros o más en busca de un sitio adecuado para pupar (Mangan 1994) - típicamente debajo de una roca, tronco o algún tipo de escombros que Sirve para mantener un ambiente húmedo. El éxodo del agua de los hellgrammitas maduros en un lugar determinado es bastante sincrónico (en unos pocos días). Voshell (2002) afirma que los residentes locales a lo largo de los ríos de Virginia informan que las tormentas eléctricas desencadenan la aparición de los hellgrammitas, un fenómeno conocido localmente como & quothellgrammite crawling & quot. Se cree que el comportamiento es estimulado por las vibraciones del trueno.

Al llegar a un sitio adecuado para la pupa, la infiernogramita típicamente excava una celda en el suelo con sus patas y piezas bucales y alisa el interior presionando los lados de su cuerpo contra la pared de la celda. Los Hellgrammitas no tienen glándulas de seda, por lo tanto, no hay seda o capullo que recubre la célula. Después de pasar de uno a 14 días dentro de la celda como prepupa, la Hellgrammite arroja su exoesqueleto para convertirse en pupa. La etapa de pupa requiere de siete a 14 días, después de lo cual el adulto emerge y sale de la celda.

Las moscas dobson adultas tienen una vida corta (alrededor de tres días para los machos y de ocho a 10 días para las hembras). Generalmente se cree que no se alimentan en la naturaleza, pero Parfin (1952) ha informado que tomarán una mezcla 3: 1 de agua con miel en cautiverio. También informa que varios entomólogos los han recolectado en cebos de fermentación pintados en troncos de árboles. Los adultos son activos por la noche y se sienten fuertemente atraídos por las luces. De lo contrario, pasan la mayor parte del tiempo en una espesa vegetación cerca de los arroyos.

Parfin (1952) y Simonsen et al. (2008) han proporcionado descripciones detalladas del comportamiento de apareamiento de la mosca dobson. Como parte del ritual previo al apareamiento, los machos colocan sus mandíbulas alargadas en las alas de las hembras perpendiculares al eje de las alas de las hembras. Las mandíbulas de los machos también funcionan en las justas con machos rivales. Sin embargo, no se observó que los machos agarraran a las hembras como se informa en la literatura más antigua.

Las hembras ponen sus huevos en superficies que sobresalen del agua, como los contrafuertes de puentes y las hojas, ramas o troncos de árboles (Mangan 1992). Las masas de huevos no están distribuidas al azar, sino que tienden a ocurrir en parches, lo que sugiere la posibilidad de una feromona de oviposición (Mangan 1992).

Figura 9. Parche de dobsonfly del este, Corydalus cornutus (Linnaeus), masas de huevos en hojas de arce rojo. Fotografía de D.W. Hall, Universidad de Florida.

Mangan (1992) presentó evidencia de que la cubierta blanca de la masa de huevo ayuda a proteger los huevos del sobrecalentamiento. También es posible que la cubierta funcione para proteger a los huevos de la depredación.

Las dobsonflies son insectos beneficiosos y deben conservarse. Los Hellgrammitas son apreciados como cebo por los pescadores (particularmente para la lubina de boca chica) y están disponibles para la venta en las tiendas de cebos en algunas áreas. Debido al esfuerzo requerido para recolectarlos, su compra es bastante costosa. Por lo tanto, pueden estar sujetos a sobreexplotación y su recolección para la venta está regulada en algunos estados. Aunque los hellgrammitas son un gran cebo para peces, rara vez se encuentran en el estómago de los peces, probablemente porque pasan la mayor parte del tiempo bajo las rocas donde son inaccesibles.

Los Hellgrammitas tienden a encontrarse en aguas relativamente no contaminadas. Por lo tanto, pueden tener valor en los estudios de biocontrol (Voshell 2002). Quizás su mayor valor sea su contribución a la biodiversidad en su hábitat como depredadores.

Referencias seleccionadas (volver al principio)

  • Arnett Jr. RH. 2000. American Insects: A Handbook of the Insects of America North of Mexico. Prensa CRC. Boca Raton, Florida. 1003 págs.
  • Contreras-Ramos A. (1997). Corydalus. Proyecto web Árbol de la vida. http://www.tolweb.org/Corydalus (9 de febrero de 2019)
  • Baker JR, Neunzig HH. 1968. Las masas de huevos, huevos y larvas de primer estadio de los Corydalidae del este de América del Norte. Anales de la Sociedad Entomológica de América 61: 1181-1187.
  • Barclay A, Portman RW, Hill PSM. 2005. Branquias traqueales de las larvas de la mosca dobson, o hellgrammite Corydalus cornutus L. (Megaloptera: Corydalidae). Revista de la Sociedad Entomológica de Kansas 78: 181-185.
  • Hoover JJ, Gage KL, Paulissen MS. 1988. Respiración de Hellgrammite: el papel de la temperatura en la fisiología ectoterma. El profesor de biología estadounidense 50: 39-42.
  • Mangan BP. 1992. Oviposición de la mosca dobson (Corydalus cornutus, Megaloptera) en un gran río. American Midland Naturalist 127: 348-354.
  • Mangan BP. 1994. Ecología de pupación de la mosca dobson. Corydalus cornutus (Corydalidae: Megaloptera) a lo largo de un gran río. Revista de ecología de agua dulce 9: 57-62.
  • McCafferty WP Provonsha AV. 1983. Entomología acuática: Guía ilustrada del pescador y el ecologista sobre insectos y sus parientes. Jones y Bartlett Publishers, Inc. Portola Valley, California. 448 págs.
  • Neunzig HH Baker JR. Orden Megaloptera. 1991. En Stehr, FW, editor. Insectos inmaduros, vol. 2. Kendall / Hunt Publishing Company. Dubuque, Iowa. págs. 112-122.
  • Parfin S. 1952. Notas sobre la bionómica de Corydalus cornutus (Linne), Chauliodes rastricornis Rambur, C. pectinicornis (Linne) y Neohermes sp. American Midland Naturalist 47: 426-434.
  • Simonsen TJ, Dombroskie JJ, Lawrie DD. 2008. Observaciones de comportamiento en la mosca dobson, Corydalus cornutus (Megaloptera: Corydalidae) con evidencia fotográfica del uso de las mandíbulas alargadas en el macho. Entomólogo estadounidense 54: 167-169.
  • Voshell JR. 2002. Una guía para los invertebrados comunes de agua dulce de América del Norte. The McDonald & amp Woodward Publishing Company. Blacksburg, Virginia. 442 págs.

Autor: Donald W. Hall, Universidad de Florida
Fotografías: Jerry F. Butler, Lyle J. Buss y Donald W. Hall, Universidad de Florida
Diseño web: Don Wasik, Jane Medley
Número de publicación: EENY-414
Fecha de publicación: julio de 2007. Última revisión: marzo de 2016. Revisado: febrero de 2019.

Una institución que ofrece igualdad de oportunidades
Editora y Coordinadora de Criaturas Destacadas: Dra. Elena Rhodes, Universidad de Florida


Larvas desconocidas en capullo gris - Biología

Calofasia lunula (Hufnagel)
(Lepidoptera: Noctuidae)

por Rich Hansen, USDA-APHIS-PPQ, Laboratorio de Ciencias Forestales, Universidad Estatal de Montana, Bozeman, MT 59717-0278.

Calofasia lúnula se introdujo en Canadá a principios de la década de 1960. Las liberaciones en los EE. UU. se iniciaron en 1968. Las poblaciones se establecen en linaza de sapo amarillo en el este de Canadá y en linaza de sapo amarillo y dálmata en varios estados del noroeste de EE. UU. y Columbia Británica. (Se dispone de información básica sobre el toadflax dálmata y el toadflax amarillo).

C. lunula los adultos son polillas grises con varias marcas de alas claras y oscuras. Las polillas miden unos 12-14 mm de largo, con una envergadura de unos 27-30 mm. Las polillas están inactivas durante el día, descansando sobre la vegetación, pero se vuelven activas durante la noche y se alimentan del néctar de varias flores, incluidas las de la linaza.

Las larvas jóvenes miden 2-3 mm de largo y son de color gris pálido. Las larvas más viejas tienen rayas longitudinales amarillas, negras y grises con manchas blancas y negras, y pueden alcanzar una longitud de 35 mm en la madurez. Las larvas se alimentan de hojas de linaza sapo dálmata y amarilla y están activas durante el día.

Las pupas son de 14-15 mm de largo, de color marrón rojizo y están contenidas dentro de capullos de seda blanca que incluyen partículas de tierra y / o restos de plantas. Los capullos se encuentran generalmente en la superficie del suelo o adheridos a la parte inferior de los tallos de las plantas.

Pastizales, pastos, campos agrícolas y bordes de caminos infestados de linaza de sapo amarillo o dálmata.

C. lunula se alimenta de linaza sapo dálmata y amarilla. La especificidad del hospedador parece restringida a especies de varios géneros de la familia Scrophulariaceae.

Las polillas adultas se cierran por primera vez a fines de la primavera y viven de varios días a más de una semana. Después del apareamiento, las hembras ponen huevos individualmente en hojas de linaza de sapo, cada hembra generalmente pone un total de 30-80 huevos.

Las larvas se alimentan del follaje de linaza sapo, al principio esqueletizando las hojas, pero luego consumiendo hojas enteras. Generalmente, las larvas se alimentan preferentemente del follaje joven, pero las hojas y flores más viejas se consumen en ausencia de hojas jóvenes. Hay cinco estadios larvarios. Las larvas maduras se arrastran por los tallos de linaza de sapo y construyen un capullo de seda en el que se añaden tierra, fragmentos de plantas o excremento, y luego pupan.

El capullo generalmente ocurre en la superficie del suelo o en la base de un tallo de linaza de sapo. Hay de una a tres generaciones por año, dependiendo de las condiciones climáticas, y el invierno se pasa en la etapa de pupa.

Calofasia lúnula las larvas pueden causar una defoliación significativa de las plantas de linaza de sapo cuando las poblaciones son grandes. Aunque generalmente no ocurre la mortalidad directa de las plantas, las plantas defoliadas generalmente producen menos flores y semillas y pueden producir menos nutrientes para el almacenamiento de las raíces. Sin embargo, los efectos a largo plazo sobre la densidad de malezas siguen siendo poco conocidos.

Se desconocen los detalles. Para obtener información general sobre la conservación de los enemigos naturales, consulte Conservación en la sección Tutorial de este sitio, Artículo principal sobre conservación en el Volumen II, No. 1 de Midwest Biological Control News.

Calofasia lunula puede estar disponible en varias agencias estatales de manejo de malezas.

Harris, P. 1963. Especificidad del hospedador de Calofasia lúnula (Hufn.) (Lepidoptera: Noctuidae). Poder. Entomol. 95: 101-105.


Factores que afectan la reproducción de los ácaros

A. Efecto de la casta de la prole

Se sabe desde hace mucho tiempo que los ácaros varroa prefieren la cría de zánganos a la cría de obreras, en una proporción de nueve a uno. Es decir, si hay un número igual de celdas disponibles, la cría de zánganos albergaría nueve veces más ácaros que la cría de obreras. La selección natural indudablemente favoreció a los ácaros que preferían los zánganos, porque la cría de zánganos tiene un período de cobertura más largo, lo que permite que maduren más ácaros hijas. De hecho, Martin (1994, 1995) calculó la tasa de reproducción efectiva (es decir, el número de frascos / hijas maduras por madre invasora) como 1.3–1.45 en una sola cría obrera infestada, mientras que para la cría de zánganos fue 2.2–2.6. En A. mellifera, la transferencia de ácaros de la cría de zánganos a la cría de obreros siempre disminuyó la tasa de reproducción de los ácaros, mientras que la transferencia de ácaros de la cría de zánganos a la cría de zánganos aumentó la tasa de reproducción. Las larvas de reinas serían un callejón sin salida para los ácaros invasores, porque las reinas emergen a los 16 días, cinco días más rápido que una obrera, por lo que las hijas de los ácaros no tienen tiempo para madurar. Los ácaros Varroa evitan las células reinas, aparentemente debido a algún olor químico de la jalea real.

B. Efecto de las especies hospedadoras

La transferencia de ácaros a través de diferentes especies sugiere que las especies hospedadoras también afectan la reproducción de los ácaros. Cuando los ácaros de A. cerana fueron presentados a A. mellifera cría obrera, sólo el 10% de los ácaros se reproducen, mientras que el 80% se reproducen cuando A. mellifera los ácaros fueron transferidos a A. cerana cría de trabajadores. En nuestro estudio, Varroa destructor, Haplotipo de Corea, de A. mellifera reproducido igualmente bien (todo & gt 90% reproducido), independientemente de si se transfirió a A. mellifera o para A. cerana, tanto en castas de drones como de trabajadores (Ting Zhou, Shuangxiu Huang y Zachary Huang, datos no publicados). A diferencia de, V. destructor, Haplotipo de Vietnam, de A. cerana solo reproducido en A. cerana drones (83% reproducidos, N = 62), y no en A. cerana trabajadores (0% reproducido en trabajadores, N = 60). Estos resultados sugieren que los ácaros de las dos especies de abejas melíferas son diferentes: ácaros de A. cerana abstenerse de reproducirse en crías obreras de la misma especie, y ácaros de A. mellifera se reproducen bien en la cría de obreras, independientemente de la especie hospedante. Parece que solo el haplotipo de Corea de V. destructor tuvo un cambio genético que le permitió reproducirse tanto en zánganos como en crías de trabajadores en A. mellifera, lo que permite que se acumule a niveles dañinos para las abejas. En China, mis colegas y yo no encontramos niveles dañinos de V. destructor en A. cerana colonias; de hecho, en la mayoría de los lugares, no se pudieron encontrar los ácaros. Cuando lo encontramos, era el haplotipo de Vietnam el que no se reproduce en la prole obrera de A. cerana. No está claro por qué el haplotipo de Corea de V. destructor no causa daño en A. cerana, ya que pueden reproducirse tanto en obreras como en crías de zánganos en experimentos de transferencia. Sin embargo, es posible que no se reproduzcan en la cría de obreras en condiciones naturales, cuando tanto los huéspedes foréticos como los reproductores estaban A. cerana. Por lo tanto, los experimentos de transferencia deben complementarse con la observación en condiciones naturales para obtener una imagen completa.

C.Efecto del tamaño de la celda

En parte porque los ácaros se reproducen mejor en la cría de zánganos que en la cría de obreras, la gente tiende a pensar que las células más pequeñas disminuirían la reproducción de los ácaros. Sin embargo, dos estudios recientes muestran que no hubo diferencia en la población de ácaros entre las colonias (Ellis et al., 2009) usando "celdas pequeñas" (4.8 a 4.9 mm de diámetro) y bases regulares (5.2-5.4 mm), o celdas pequeñas en realidad tenía una población de ácaros significativamente mayor (Berry et al., 2010). Desafortunadamente, ninguno de estos estudios recientes determinó la fecundidad o fertilidad de los ácaros en los dos tipos de células.

Los estudios anteriores fueron contradictorios. Taylor y col. (2007) encontraron que el tamaño de la célula "base" no afectó el éxito reproductivo de V. destructor, pero más ácaros invadieron las células extraídas de la base de 4,8 mm. Sin embargo, Piccirillo y De Jong (2003) y Maggi et al. (2010) encontraron que la tasa de invasión de ácaros aumentaba de manera positiva y lineal con el ancho de las celdas de cría de obreros y zánganos, probablemente porque las crías que se desarrollan en celdas grandes reciben más visitas de enfermeras, lo que aumenta la posibilidad de invasión. Maggi y col. (2010) también encontraron que el porcentaje de ácaros fértiles era menor en las células más pequeñas. Un estudio anterior (Message y Goncalves, 1995) mostró que en las abejas africanizadas, las células más grandes tenían una tasa de invasión más alta y también tenían una fecundidad efectiva más alta en los ácaros.

Nuestro propio estudio sugiere que las células que son demasiado grandes también reducen la reproducción de los ácaros (Zhou et al., 2001). En un estudio que intenta determinar los mecanismos de por qué los ácaros varroa no se reproducen en la cría de obreras de A. cerana, descubrimos accidentalmente que en ambos A. cerana y A. mellifera las reinas pusieron huevos de obreras en celdas de drones en el otoño. Aprovechamos esto y comparamos la producción reproductiva de los ácaros en dos huéspedes: trabajadores criados en células obreras (WW) o trabajadores criados en células de drones (WD). En 2001, tanto la fertilidad como la fecundidad de los dos grupos fueron significativamente diferentes (Fig. 4). No está claro por qué los ácaros se reproducirían menos en huéspedes idénticos alojados en células más grandes. Una posibilidad es que los trabajadores criados en células de drones sean alimentados con una dieta diferente por parte de las enfermeras (un estudio mostró que los trabajadores criados en células de drones eran más pesados ​​y tenían más ovarios, lo que sugiere una dieta diferente o más nutrición). Una segunda posibilidad es que los trabajadores hilan capullos más grandes en las células de los drones y los ácaros detectan el espacio extra, y esto afecta su reproducción.

D. Efecto de la humedad

Kraus y Velthuis (1997) se preguntaron por qué los ácaros varroa no eran un problema tan grande en los trópicos (además del hecho de que la mayoría de las abejas eran africanas) y probaron en el laboratorio para ver si la humedad relativa alta inhibiría la reproducción de los ácaros. Transfirieron artificialmente ácaros individuales a células recién tapadas y luego mantuvieron la cría en una incubadora. Cuando la humedad relativa (RH) se fijó en 59-68%, en promedio, el 53% de los ácaros produjeron descendencia (N = 174 ácaros) bajo 79-85% RH, sólo el 2% (N = 127) de los ácaros se reprodujeron. La diferencia en la fertilidad de los ácaros fue muy significativa. Recientemente, mi postdoctor configuró incorrectamente la incubadora a una HR del 75% (en lugar del 50%) y, como resultado, se reprodujeron muy pocos ácaros. Si hay formas de aumentar artificialmente la HR de la colmena a aproximadamente un 80%, entonces la población de ácaros varroa nunca aumentará a un nivel dañino.

E. Efecto del movimiento del peine

Aparte de dónde defecan, los ácaros varroa también son muy exigentes con respecto a dónde se alimentan. La madre lleva a sus “hijos” a un sitio de alimentación particular en la pupa (entre el par de patas traseras en el lado ventral del abdomen) y luego los conduce de regreso al sitio de defecación. Por lo tanto, ¿cualquier rotación de panales provocará el movimiento de la pupa huésped? and perhaps causes disorientation of the mites. The “Kônya beehive with rotating frame [sic] of brood nest” was invented (and patented) by Lajos Kônya, from Hungary. The hive body has round frames and they rotate ten degrees per hour, thus completing a circle in 36 hours. This is powered by a 12 volt battery. Varroa mites are not able to reproduce, due to the constant rotation of the cells. I was pretty confident that the claims were true based on mite reproductive biology. However, an abstract (Aumeier et al., 2006) said they studied the rotation of combs on mite reproduction for three years and found no evidence that it worked. Daily rotating or shaking of brood cells neither “affected fertility (93-100%) nor fecundity (2.6-3.0) of reproductive mites or mortality of mite offspring in the brood cells.” This is a bit surprising because I thought prior to filing for the patent, the inventor should have obtained data showing that the rotation affected mite reproduction? However the study did report that swarm cells were removed due to the rotation, so the Kônya hive does work for swarm prevention.

F. Effect of Host Age, a Kairomone, a Hormone, a Pheromone, and Genes

Varroa mites that have been artificially introduced into brood cells that have been capped for over 14 hours will never reproduce. Of mites that were introduced to cells 12 hours post-capping, about 10% reproduced. Garrido and Rosenkranz (2004) therefore hypothesized that an odor from fifth instar larvae are used as signals by mites to activate their ovaries. This chemical, since it benefits the receiver, should be called a kairomone. They then designed a special cage to confine mites over various testing objects, and found that mites activated oogenesis after perceiving larval volatilities, and those mites were deprived of food, since any bee blood could also contain signals. Pentane extracts of the larval cuticle also caused ovary activation, suggesting that the chemical signal is polar. The chemical remains unidentified.

Initially there was a hypothesis that the juvenile hormone (JH) in the honey bee larvae/pupae could be the factor that activated varroa ovaries, and therefore regulated their reproduction. JH is an important hormone and in most insects it regulates oogenesis and spermatogenesis. This theory was abandoned after observing no differences in JH titers in Africanized and European bee larvae, even though it has been proven that Africanized bees have much lower mite reproduction rates (mainly due to a much higher percentage of infertile mites).

When more than one mite invade a single brood cell, the per capita fecundity decreases, as the number of mother mites per cell increases. Mites invading brood cells in older combs also have fewer offspring. This led scientists to speculate that mites themselves might have a chemical to inhibit each other’s reproduction (a pheromone). A chemical, (Z)-8-heptadecene, was identified. In the laboratory, it caused a 30% reduction in mite fecundity. When tested in the colony, the average number of offspring was 3.48 in cells treated with (Z)-8-heptadecene, but 3.96 in control cells. This difference was small, but statistically, highly significant (P < 0.01). The effective fecundity (number of potentially mated daughters) was 0.94 in treated cells, and 1.31 in control cells and this level of difference should have a rather large impact on population growth.

To initiate reproduction, many complicated physiological processes have to be in place. Finding genes critical to these processes can potentially lead to new ways of mite control. My lab recently started a project to hunt for genes important for survival and reproduction in mites, through the use of RNA interference (RNAi). RNAi is a method to inject a relatively large stretch of double stranded RNA (400-500 base pair long), which gets cut into 20-30 bases long, then binds to some complexes which eventually finds complementary stretches of RNA and degrade them, resulting in the reduction of a targeted gene’s messenger RNA, ultimately their protein product. Our basic principle is to search for the same genes regulating survival or reproduction in related organisms (e.g. ticks) in the mite genome, synthesize double stranded (ds) RNA, inject the dsRNA into mites, and then observe their survival. If the injected mites survive, then we proceed to observe their reproduction by introducing them into newly capped brood cells. Once a list of genes are found, we then need to ensure that the dsRNA are specific to mites, and will not affect bees, then find a way to introduce the dsRNA to mites (either directly or to the hemolymph of bees, which then get passed to mites due to their feeding).


Larvas de caddisfly constructoras de casos (orden Trichoptera)

Alimentación:
Trituradoras / raspadores / recolectores & # 8211 Las larvas se alimentan principalmente de perifiton (capa de algas y flora y fauna asociadas) y trozos de vegetación tanto acuática como terrestre.

Habitat:
Las larvas constructoras de casos se pueden encontrar en una variedad de ecosistemas, desde pequeños estanques y arroyos hasta grandes lagos y ríos.

Movimiento:
Trepadores o rastreadores que se asemejan a los cangrejos ermitaños. Algunas especies pequeñas pueden nadar.

Tamaño:
El tamaño de las larvas de la mosca caddis varía de 3 mm a aproximadamente 40 mm (los casos de algunas especies grandes pueden alcanzar tamaños alrededor de 60 mm).

Ciclo vital:
Las moscas Caddis sufren una metamorfosis completa. Su ciclo de vida incluye cuatro etapas: huevo, larva, pupa y adulto. La mayoría de las especies producen una generación por año.

Introducción:
Caddis, insectos discretos de color marrón a gris, son el grupo de insectos ecológicamente diverso e importante. Las moscas Caddis están estrechamente relacionadas con las polillas (orden Lepidoptera), con las que a menudo se las confunde. Al igual que en las polillas, las moscas caddis son activas durante la noche y se sienten atraídas por la luz (que representa una importante fuente de alimento para los murciélagos). Sus alas están cubiertas de pelos en lugar de escamas, como en polillas. Las piezas bucales están emparejadas y son rectas, mientras que las polillas tienen un tubo largo y enrollado (probóscide).

Los adultos viven alrededor de un mes y se alimentan del néctar absorbido por aparatos bucales simples. Las hembras de la mosca caddis ponen masas de huevos en la vegetación justo por encima de la superficie del agua. Cuando las larvas salen de los huevos, caen al agua e inmediatamente comienzan a formar estuches protectores.

Cuando la larva está completamente desarrollada, entra en la fase de pupa. La larva sujeta la caja a algún objeto sólido, como una piedra o una pieza más grande de madera sumergida, y sella la abertura. Posteriormente crea el capullo de seda alrededor del cuerpo. Los casos de pupa pueden perforarse y, por lo tanto, son permeables al agua. Además, los insectos que se transforman dentro de la caja se ondulan para crear un flujo de agua oxigenada alrededor del cuerpo.

Todos los miembros del orden Trichoptera son acuáticos como en las etapas de larvas y pupas, mientras que los adultos son terrestres. Algunas especies todavía se conocen solo como adultas, mientras que sus estadios larvarios aún no se han descrito. Las larvas constructoras de cajas son el grupo más diverso y abundante, y viven tanto en aguas corrientes como en aguas tranquilas.

Las larvas de Caddisfly tienen cuerpos alargados que se asemejan a las orugas de polillas y mariposas (semejanza entre los adultos). Las larvas siempre tienen la cabeza endurecida (esclerotizada) y el primer segmento torácico, mientras que el abdomen permanece pálido y blando. El segundo y tercer segmento torácico también se pueden cubrir con placas quitinosas endurecidas. La posición y el tamaño de las placas son a menudo características de identificación importantes entre las especies.

Un par de patas segmentadas se extiende desde cada segmento torácico. Las piernas pueden tener modificaciones como terminaciones afiladas, ganchos o filas de pelotas. Su propósito es ayudar a las larvas a moverse, construir el refugio o recolectar comida. El abdomen termina con un par de prolegs equipados con garras. Se utilizan para anclar las larvas en el estuche. Los ojos son pequeños y sencillos. Las antenas son muy pequeñas y solo se pueden ver cuando se usa un gran aumento.

Las piedras y los trozos de madera sumergidos continuamente proporcionan el mejor sustrato para el crecimiento de algas y perifiton, que las larvas desechan con eficacia. Mientras pastan, las larvas de la mosca caddis pueden consumir una porción significativa de las algas disponibles en el arroyo. Algunas especies con piezas bucales grandes trituran hojas de plantas terrestres que caen al agua.

Las larvas de Caddisfly obtienen oxígeno disuelto en agua a través de una piel fina y suave. Algunas especies tienen branquias o jorobas ramificadas a los lados del cuerpo (para aumentar la superficie corporal). Las larvas ondulan su cuerpo para crear un flujo de agua oxigenada a través de la carcasa.

La razón principal por la que las moscas caddis son tan exitosas y generalizadas es su capacidad para producir un hilo de seda. Es girado por glándulas colocadas en el labio (la misma parte de la cabeza que las libélulas modificadas para formar una máscara de caza). Las larvas de la mosca caddis constructoras de cajas utilizan la seda para construir varios refugios portátiles. Protegen el abdomen blando de los depredadores y la abrasión de las partículas gruesas que se mueven a la deriva. Si se molesta, la larva puede retirarse a la caja, que se repara constantemente cuando se daña o se reconstruye a medida que la larva crece.

Los estuches vienen en una gran variedad de formas y estructuras. Están hechos de seda y una gama de materiales vide (algunos están hechos exclusivamente de seda). El material de construcción usado puede ser importante para la identificación, aunque algunas larvas lo cambian a medida que crecen o cuando se dispone de materiales estacionales (por ejemplo, semillas de plantas terrestres o conchas de caracoles). Por último, pero no menos importante, algunas especies grandes pueden incorporar casos de otras especies más pequeñas en sus propios casos grandes. Además de la disponibilidad, la elección de los materiales depende del medio ambiente. En general, las larvas que viven en agua corriente utilizan componentes más pesados ​​para aumentar su peso total. Les ayuda cuando se mueven en la corriente, o incluso evita que se laven río abajo. Por otro lado, las larvas que habitan en aguas tranquilas tienden a construir sus estuches con materiales livianos. Utilizan diversas partes de la vegetación viva o muerta, como ramitas, tallos, hojas, agujas o trozos de corteza.

Algunas plantas acuáticas desarrollaron una modificación que implicó el uso de cámaras de aire en las hojas (para mantenerlas en posición vertical). Algunas larvas de caddisfly cortan estas hojas y las usan para construir cajas flotantes.

Las larvas son sensibles a la contaminación y por esta razón se utilizan en todo el mundo como indicadores de la calidad del agua.


2.3 Life-cycle

Adult beetles feed on the surface of dried fish, and they lay their eggs in crevices in the fish. The larvae burrow deeply into the flesh as well as feeding on the fish, they are predatory on the larvae of some flies, and on the eggs and larvae of Dermestes spp. The larvae pass through three or four instars. The last instar larva spins a cocoon in which pupation occurs: this may be within the fish flesh, or the larva may leave the fish and pupate in any dark crevice. The life-cycle takes about 6 weeks or longer depending on food type and physical conditions. Under optimum conditions, the rate of population increase is about 25 times per month. The adults fly actively and can thus easily disperse to new sources of food.


Beet Armyworm

Beet armyworm, Spodoptera exigua (Hubner), Noctuidae, LEPIDOPTERA

DESCRIPCIÓN

Adult &ndash The beet armyworm moth has a wingspan of 25 to 32 mm. Its forewings are mottled gray or brown with a pale spot near the center of each wing. Its hind wings are white with dark veins and have a fringe-like border.

Huevo &ndash The white to pink, ribbed egg is roughly spherical in shape and slightly peaked on top. Scales and hairs from the moth give the egg cluster a gray, fuzzy appearance.

Larva &ndash This green or black caterpillar has a dark head, five pairs of prolegs, and sometimes three lightly colored stripes running the length of the body (Figure B). On the second segment behind the head, there is a small black spot on each side of the body. This spot usually becomes visible to the field observer when the caterpillar reaches 7 to 8 mm long however, the spot may be difficult to see on a dark caterpillar. About 1 mm long when newly emerged, a larva may be 25 to 30 mm long when fully grown.

Crisálida &ndash About 15 to 20 mm long, the pupa is light brown with dark brown margins along the abdominal segments.

Distribución &ndash Native to the Orient and introduced into this country around 1875, the beet armyworm is now common throughout the southern and western United States. It occurs northward into Montana.

Host Plants &ndash The beet armyworm infests many weeds, trees, grasses, legumes, truck crops, and field crops. In various states, it is of economic concern upon asparagus, cotton, corn, soybean, tobacco, alfalfa, table and sugar beets, pepper, tomato, potato, onion, pea, sunflower, and citrus. In addition, plantain, lambsquarters and redroot pigweed are wild hosts which are attractive to beet armyworms.

Damage &ndash Early instar beet armyworms most frequently damage the young terminal growth. Profuse silk webbing may give infested plants a shiny appearance. Later instars do not feed gregariously and the production of webbing is discontinued.

Life History &ndash In warm areas, such as Florida and California, the beet armyworm moths may be found year-round. In less tropical areas, these insects can survive the winter as pupae in the upper 6 cm of the soil. The extent of the overwintering distribution, however, has not been adequately studied. This insect is not believed to overwinter as far north as Kentucky or North Carolina. Vegetable crops in North Carolina apparently become infested by migrating moths. In spring, soon after mating, fertilized females begin laying eggs in clusters of about 80. Each female can deposit approximately 600 eggs over a 3- to 7-day period. Moths die 4 to 10 days after emerging from pupae.

Eggs hatch in 2 to 3 days. The newly emerged larvae spin loose webs around themselves, feed gregariously on the remains of the egg mass, and then attack plant foliage. They eventually scatter to different parts of the plant. After feeding 1 to 3 weeks, larvae (fifth instars) pupate within loose cocoons composed of soil particles, leaf fragments and trash. About 1 week later moths emerge. The entire life cycle requires 4 to 5 weeks. Several generations occur each year.

The beet armyworm has few effective parasites, diseases, or predators to lower its population. Effective chemicals for beet armyworm control are available to the commercial vegetable producer or licensed applicator. Most chemicals cleared for home garden use will not control this pest adequately. For up-to-date recommendations, consult the current North Carolina Agricultural Chemicals Manual.

Beet armyworm. A. Adult. B-C. Eggs (enlarged). D. Egg Mass. E-F. Larvae. G. Larval head. H. Pupa.


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