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¿Alguien puede identificar esta flor brasileña?

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La foto fue tomada en enero de 2004, en el Parque Estadual do Rio Preto (Parque Estatal Black River), en el Cerrado (como una sabana) del noreste-centro de Minas Gerais, Brasil.

La planta era herbácea / arbustiva, pero ¿quizás fue por su tierna edad?


Aflatoxinas: presencia, propiedades y controles | Enfermedades de las plantas

En este artículo discutiremos sobre: ​​1. Introducción a las aflatoxinas 2. Aparición y distribución de aflatoxinas 3. Producción de fluorescencia 4. Propiedades 5. Riesgos para la salud 6. Factores que favorecen la producción de aflatoxinas 7. Análisis de aflatoxinas en alimentos y piensos 8. Control y manejo 9. Control biológico.

  1. Introducción a las aflatoxinas
  2. Aparición y distribución de aflatoxinas
  3. Producción de fluorescencia de aflatoxinas
  4. Propiedades de las aflatoxinas
  5. Riesgos para la salud causados ​​por las aflatoxinas
  6. Factores que favorecen la producción de aflatoxinas
  7. Análisis de aflatoxinas en alimentos y piensos
  8. Control y manejo de aflatoxinas
  9. Control biológico de aflatoxinas

1. Introducción a las aflatoxinas:

La micotoxina (Gk. Mykes, hongos-hongos) es una toxina producida por un organismo del hongo que incluye hongos, mohos y levaduras. Las aflatoxinas son micotoxinas naturales que son producidas como metabolitos secundarios por algunas cepas de Aspergillus flavus y A. parasiticus, además de especies relacionadas A. nomius y A. niger en una variedad de alimentos que causan peligros para la salud de los animales que las consumen.

2. Presencia y distribución de aflatoxinas:

La aflatoxina en los cerdos se informó en Georgia, Estados Unidos, en 1940. La muerte de los cerdos se rastreó como resultado de la alimentación con maíz moho. Un incidente similar ocurrió en 1950 en Alabama. En 1960, más de 100.000 pavos jóvenes de granjas avícolas en Inglaterra murieron en el transcurso de unos meses a causa de una enfermedad aparentemente nueva que se denominó enfermedad X del pavo.

Pronto se descubrió que la dificultad no se limitaba a los pavos. Los patitos y los faisanes jóvenes también se vieron afectados y se experimentó una gran mortalidad. Una encuesta cuidadosa de los primeros brotes mostró que todos estaban asociados con alimentos, es decir, harina de maní brasileña.

Se llevó a cabo una investigación intensiva de la harina de maní sospechosa y rápidamente se descubrió que esta harina de maní era altamente tóxica para las aves de corral y los patitos con síntomas típicos de la enfermedad X del pavo.

Las especulaciones hechas durante 1960 sobre la naturaleza de la toxina sugirieron que podría ser de origen fúngico. De hecho, el hongo productor de toxinas fue identificado como Aspergillus flavus en 1961 y la toxina recibió el nombre de Aflatoxina en virtud de su origen (A. flavus & gt Afla).

Este descubrimiento ha llevado a una mayor conciencia de los peligros potenciales de estas sustancias como contaminantes de alimentos y piensos que causan enfermedades e incluso la muerte en humanos y otros mamíferos.

En la India, se encontraron niveles de aflatoxinas en el rango de 1000 a 5000 ppb (partes por mil millones) en el 12% de las muestras de maní en 1965 durante un estudio realizado en Andhra Pradesh, el 50% de las muestras de torta de maní fueron positivas para aflatoxina en 1976 en Madhya Pradesh, De manera similar, un estudio realizado por el Instituto Nacional de Nutrición (NIN) (Hyderabad) registró una contaminación por aflatoxinas en el grano de maíz de hasta 1560 ppb, lo que resultó en la muerte de 100 personas por hepatitis aguda en cinturones tribales en el oeste de la India en 1986.

Biología de Aspergillus flavus y Aspergillus Parasiticus:

Los dos hongos A. flavus Link ex Fr. y A. parasiticus Spear, están estrechamente relacionados y crecen como saprófitos en el material orgánico que queda sobre y en el suelo. Se distribuyen por todo el mundo, con tendencia a ser más comunes en países con climas tropicales que tienen rangos extremos de precipitación, temperatura y humedad.

Los miembros del género Aspergillus se caracterizan por la producción de conidióforos no septados, que son bastante distintos de las hifas y que se hinchan en la parte superior para formar una vesícula en la que nacen numerosas células especializadas productoras de esporas, conocidas como phialides o sterigmata. directamente (uniseriado) o en excrecencias cortas conocidas como metulae (biseriado).

En algún momento pueden surgir dificultades especialmente para determinar porque los esterigmas primarios son pequeños y se oscurecen fácilmente por esporas u otros esterigmas. Las colonias de A. flavus son de color verde-amarillo a amarillo-verde o verde en agar Czapek & # 8217s. Por lo general tienen esterigmas biseriados, a menudo están presentes esclerocios de color marrón rojizo, los conidios son finamente rugosos, de tamaño variable y de forma ovalada a esférica.

Las colonias de A. parasiticus de color verde oscuro en agar Czepak & # 8217s, permanecen verdes con la edad. Los esterigmas son uniseriados, los esclerocios suelen estar ausentes. Los conidios son toscamente equinulados, uniformes en forma, tamaño y equinulación. Hay alrededor de 18 tipos diferentes de aflatoxinas identificadas. Los miembros principales son cuatro más dos productos metabólicos adicionales, designados como B1 B2, G1 GRAMO2, y M2.

3. Producción de fluorescencia de aflatoxinas:

Las aflatoxinas presentan una fuerte fluorescencia en luz ultravioleta (365 nm). La designación de las aflatoxinas B1 y B2 resultó de la exhibición de fluorescencia azul de las estructuras relevantes bajo luz ultravioleta, G1 y G2 Forman fluorescencia verde amarillo bajo luz ultravioleta.

Mientras que M1 y M2 se aislaron por primera vez de la leche de animales lactantes alimentados con preparaciones de aflatoxinas. A. flavus típicamente produce B1 y B2, mientras que A. parasiticus produce G1 y G2 así como B1 y B2. Otras cuatro aflatoxinas M1, M2, B2A y G2A (Fig. 20.4) se aislaron de cultivos de A. flavus y A. parasiticus.

4. Propiedades de las aflatoxinas:

Los estudios revelaron (cuadro 20.1) que las aflatoxinas son producidas principalmente por algunas cepas de A. flavus y por la mayoría, si no todas, las cepas de A. parasiticus, además de especies relacionadas, A. nomius y A. niger. Además, estos estudios también revelaron que hay cuatro aflatoxinas principales: B1, B2, G1, G2 más dos productos metabólicos adicionales, M1 y M2, que son importantes como contaminantes directos de alimentos y piensos.

Las aflatoxinas M1 y M2 se aislaron por primera vez de la leche de animales lactantes alimentados con preparaciones de aflatoxinas, de ahí la designación M. Considerando que la denominación B de las aflatoxinas B1 y B2 resultó de la exposición de fluorescencia azul bajo luz ultravioleta, mientras que la designación G se refiere a la fluorescencia amarillo-verde de las estructuras relevantes bajo luz ultravioleta.

Estas toxinas tienen estructuras muy similares y forman un grupo único de compuestos heterocíclicos naturales altamente oxigenados. Los productos alimenticios contaminados con aflatoxinas incluyen cereales (maíz, sorgo, mijo perla, arroz, trigo, etc.), semillas oleaginosas (maní, soja, girasol, algodón), especias (chiles, pimienta negra, cilantro, cúrcuma, zinger), nueces de árbol ( almendras, pistachos, nueces, cocos) y leche.

Las aflatoxinas son potentes agentes inmunosupresores tóxicos, cancerígenos, mutagénicos, producidos como metabolitos secundarios por el hongo Aspergillus flavus y A. parasiticus en una variedad de productos alimenticios. Entre los 18 tipos diferentes de aflatoxinas identificadas, los principales miembros son la aflatoxina B1 B2, G1 y G2 (Figura 20.4). La aflatoxina B1 (AFB1) es normalmente predominante en cantidad tanto en cultivos como en productos alimenticios.

Pure AFB1 es un sólido cristalino, inodoro, de color blanco pálido a amarillo. Las aflatoxinas son solubles en metanol, cloroformo, acetona, acetonitrilo. Aflatoxina M1 y M2 son los principales metabolitos de la aflatoxina B1 y B2 respectivamente, que se encuentran en la leche de animales que han consumido piensos contaminados con aflatoxinas.

Las aflatoxinas se refieren normalmente al grupo de las difuranocumarinas y se clasifican en dos grandes grupos según su estructura química: la serie de difurocumarociclopentenona (AFB1, AFB2, AFB2A, AFM1, AFM2, AFM2A y aflatoxicol) y la serie de difurocumarolactona (AFG1, AFG2, AFG2 , AFGM2, AFGM2A y AFB3).

Las aflatoxinas muestran una potencia de toxicidad, carcinogenicidad, mutagenicidad del orden de AFB1 & gt AFG1 & gt AFB2 & gt AFG2 como se ilustra por sus valores LD50 para patitos de un día.

Estructuralmente, el resto de dihidrofurano, que contiene un doble enlace, y los constituyentes que le gustan al resto de cumarina son de importancia para producir efectos biológicos. Las aflatoxinas presentan una fuerte fluorescencia en luz ultravioleta (aproximadamente 365 nm) B1 y B2 producir una fluorescencia azul donde como G1 y G2 Producen fluorescencia verde.

5. Riesgos para la salud causados ​​por las aflatoxinas:

En 1967, veinte personas de Taiwán enfermaron con aparente intoxicación alimentaria debido al arroz mohoso que luego se confirmó que contenía aflatoxina B1. En 1978 se encontraron niveles significativos de aflatoxina en el hígado 23 de niños que habían muerto de síndrome de Rye & # 8217 en Tailandia. En la autopsia también se descubrió que los niños que murieron en Checoslovaquia y Nueva Zelanda en 1977 tenían aflatoxina en el hígado.

El brote de hepatitis que afectó a 400 personas en los estados occidentales de la India en 1974, de las cuales 100 murieron por consumir maíz contaminado con A. flavus que contenía alrededor de 15 mg / kg de aflatoxinas. La aflatoxicosis es principalmente una enfermedad hepática. La susceptibilidad de los animales individuales a las aflatoxinas varía considerablemente según la especie, la edad, el sexo y la nutrición.

De hecho, las aflatoxinas causan daño hepático, disminución de la producción de leche y huevos, infecciones recurrentes como resultado de la supresión de la inmunidad (por ejemplo, salmonelosis), además de toxicidad embrionaria en animales que consumen bajas concentraciones en la dieta. Si bien las crías de una especie son más susceptibles, todas las edades se ven afectadas pero en diferentes grados para diferentes especies.

Los signos clínicos de aflatoxicosis en animales incluyen disfunción gastrointestinal, reducción de la productividad, reducción de la utilización y eficiencia del alimento, anemia e ictericia. Los animales lactantes pueden verse afectados como resultado de la conversión de aflatoxina B1 al metabolito aflatoxina M1 excretado en la leche de ganado lechero.

Figura 20.6. Una rata viva alimentada con altas dosis de aflatoxinas B1. Observe los tumores inducidos en el hígado.

La inducción de cáncer por aflatoxinas se ha estudiado ampliamente. Aflatoxina B1, aflatoxina M1 y aflatoxina G1 Se ha demostrado que causa varios tipos de cáncer en diferentes especies animales.

Sin embargo, solo la aflatoxina B1 es considerado por la Agencia Internacional para la Investigación del Cáncer (IARC) como que ha producido suficiente evidencia de carcinogenicidad en animales de experimentación para ser identificado como carcinógeno (Fig. 20.5 y 20.6).

Por tanto, se demostró que las aflatoxinas son potentes agentes inmunosupresores, carcinógenos, mutagénicos y tóxicos. Su toxicidad está ilustrada por su LD50 valores para patitos de un día (Tabla 20.2).

Efecto de la contaminación por A. Flavus y aflatoxinas:

Deterioro de la calidad del grano debido al crecimiento de A. flavus y se vuelve inadecuado para la comercialización y el consumo. En el maní, la pudrición de semillas y plántulas no emergidas y la enfermedad de las raíces afla se observó debido al ataque de hongos. La contaminación por aflatoxinas en los cereales representa una gran amenaza para la salud humana y ganadera, así como para el comercio internacional.

Según estimaciones de la FAO, el 25% de los cultivos alimentarios del mundo se ven afectados por micotoxinas cada año. Y también la pérdida de cultivos debido a la contaminación por aflatoxinas cuesta a los productores estadounidenses más de $ 100 millones por año en promedio, incluidos $ 26 millones en maní ($ 69,34 / ha).

6. Factores que favorecen la producción de aflatoxinas:

El crecimiento de hongos y la contaminación por aflatoxinas son consecuencia de interacciones entre el hongo, el huésped y el medio ambiente. Las combinaciones apropiadas de estos factores determinan la infestación y colonización del sustrato y el tipo y cantidad de aflatoxina producida.

Sin embargo, se requiere un sustrato adecuado para el crecimiento de hongos y la subsiguiente producción de toxinas, aunque no se comprenden bien los factores precisos que inician la formación de toxinas.

El estrés hídrico, el estrés por altas temperaturas y el daño causado por los insectos a la planta huésped son los principales factores determinantes de la infestación por moho y la producción de toxinas. De manera similar, las etapas específicas de crecimiento de los cultivos, la baja fertilidad, las altas densidades de cultivos y la competencia de malezas se han asociado con un mayor crecimiento de moho y producción de toxinas.

La formación de aflatoxinas también se ve afectada por el crecimiento asociado de otros mohos o microbios. Por ejemplo, la contaminación de los cacahuetes y el maíz por aflatoxinas antes de la cosecha se ve favorecida por las altas temperaturas, las condiciones de sequía prolongada y la alta actividad de insectos, mientras que la producción de aflatoxinas en el maíz y los cacahuetes después de la cosecha se ve favorecida por las temperaturas cálidas y la alta humedad.

7. Análisis de aflatoxinas en alimentos y piensos:

Muestreo y preparación de muestras:

El muestreo y la preparación de muestras siguen siendo una fuente considerable de error en la identificación analítica de aflatoxinas. Por lo tanto, los enfoques sistemáticos de muestreo, preparación de muestras y análisis son absolutamente necesarios para determinar las aflatoxinas a nivel de partes por mil millones.

A este respecto, se han elaborado y probado rigurosamente planes específicos para algunos productos básicos, como el maíz, el maní y los planes de muestreo de frutos secos para algunos otros productos básicos. Una característica común de todos los planes de muestreo es que toda la muestra primaria debe molerse y mezclarse de modo que la porción de prueba analítica tenga la misma concentración de toxina que la muestra original.

Cromatografía de capa fina:

La cromatografía de capa fina (TLC), también conocida como cromatografía de lecho plano o cromatografía plana, es una de las técnicas de separación más utilizadas en el análisis de aflatoxinas. Desde 1990, se ha considerado el método oficial de la AOAC y el método de elección para identificar y cuantitativamente las aflatoxinas en niveles tan bajos como 1 rg / g (cuadro 20.3). El método TLC también se utiliza para verificar los hallazgos mediante técnicas más nuevas y rápidas.

Cromatografía líquida:

La cromatografía líquida (LC) es similar a la TLC en muchos aspectos, incluida la aplicación analítica, la fase estacionaria y la fase móvil. La cromatografía líquida y la TLC se complementan.

No es inusual que un analista utilice TLC para el trabajo preliminar para optimizar las condiciones de separación de LC. Los métodos de cromatografía líquida para la determinación de aflatoxinas en los alimentos incluyen LC en fase normal (NPLC), LC en fase reversa (RPLC) con derivatización antes o antes de la columna (BCD), RPLC seguida de derivatización posterior a la columna (PCD) y RPLC con detección electroquímica.

Métodos inmunoquímicos:

Los métodos de cromatografía en capa fina y LC para determinar las aflatoxinas en los alimentos son laboriosos y requieren mucho tiempo. A menudo, estas técnicas requieren conocimiento y experiencia en técnicas cromatográficas para resolver problemas de separación e interferencia.

Gracias a los avances en biotecnología, ahora están disponibles comercialmente pruebas basadas en anticuerpos altamente específicos que pueden identificar y medir las aflatoxinas en los alimentos en menos de 10 minutos.

Estas pruebas se basan en las afinidades de los anticuerpos monoclonales o policlonales por las aflatoxinas. Los tres tipos de métodos inmunoquímicos son el radioinmunoensayo (RIA), el ensayo inmunoabsorbente ligado a enzimas (ELISA) y el ensayo en columna de inmunoafinidad (ICA).

Manonmani (2006) desarrolló un método rápido para la evaluación de hongos aflatoxigénicos en los alimentos utilizando cebadores diseñados de forma autóctona para el gen regulador de aflatoxinas aflR en la PCR muestra una amplificación positiva con ADN de A. flavus aflatoxigénico y A. parasiticus puede detectar hasta 100 ufc de toxigénicos diana. hongos

8. Control y manejo de aflatoxinas:

Las aflatoxinas se consideran contaminantes inevitables de los alimentos y piensos, incluso cuando se han seguido buenas prácticas de fabricación. La FDA ha establecido pautas específicas sobre niveles aceptables de aflatoxinas en alimentos para humanos y animales al establecer niveles de acción que permiten la eliminación de lotes volátiles del comercio.

El nivel de acción para la alimentación humana es de 20 ppb de aflatoxinas totales, con la excepción de la leche, que tiene un nivel de acción de 0,5 ppb para la aflatoxina M1. El nivel de acción para la mayoría de los feeds también es de 20 ppb.

Sin embargo, es muy difícil estimar con precisión la concentración de aflatoxinas en una gran cantidad de material debido a la variabilidad asociada con los procedimientos de prueba. No se dispone de datos presentables para formar una base experimentalmente válida para la regulación de los niveles de aflatoxinas en alimentos y piensos, por lo que la concentración real de aflatoxinas en un lote no se puede determinar con un 100% de certeza.

En EE. UU. Y Europa, las aflatoxinas son solo micotoxinas reguladas jurisdiccionalmente (Tabla 20.2 y Tabla 20.3). En los países asiáticos, la regulación se introduce principalmente para proteger el mercado de exportación. Por otra parte, se prestó poca atención a las medidas reglamentarias nacionales sobre las aflatoxinas. En la India se ha promulgado legislación sobre micotoxinas, pero su implementación es inadecuada.

Estrategias de desintoxicación:

Dado que la contaminación por aflatoxinas es inevitable, se han propuesto numerosas estrategias para su desintoxicación. Estos incluyen métodos físicos de separación, inactivación térmica, irradiación, extracción con solvente, adsorción de solución, inactivación microbiana y fermentación. Los métodos químicos de desintoxicación también se practican como una estrategia importante para una desintoxicación eficaz.

Degradación estructural después del tratamiento químico:

Se ha probado la capacidad de un grupo diverso de productos químicos para degradar e inactivar las aflatoxinas. Varios de estos productos químicos pueden reaccionar para destruir (o degradar) las aflatoxinas de manera eficaz, pero la mayoría son poco prácticos o potencialmente inseguros debido a la formación de residuos tóxicos o la perturbación del contenido de nutrientes y las propiedades organolépticas del producto.

Dos enfoques químicos para la desintoxicación de aflatoxinas que han recibido una atención considerable son el amoníaco y la reacción con bisulfito de sodio.

Muchos estudios proporcionan evidencia de que el tratamiento químico a través de amoniaco puede proporcionar un método eficaz para desintoxicar el maíz contaminado con aflatoxinas y otros productos básicos. El mecanismo de esta acción parece implicar la hidrólisis del anillo de lactona y la conversión química del compuesto original aflatoxina en numerosos productos que presentan una toxicidad muy reducida.

Por otro lado, se ha demostrado que el bisulfito de sodio reacciona con las aflatoxinas (B1, G1 y M1) en diversas condiciones de temperatura, concentración y tiempo para formar productos solubles en agua.

Modificación de la toxicidad por sustancias químicas dietéticas:

La toxicidad de las micotoxinas puede verse fuertemente influenciada por los químicos de la dieta que alteran las respuestas normales de los sistemas de los mamíferos a estas sustancias.

Una variedad variable de factores químicos, incluidos componentes nutricionales (p. Ej., Proteínas y grasas dietéticas, vitaminas y oligoelementos), aditivos alimentarios y piensos (p. Ej., Antibióticos y conservantes), así como otros factores químicos, pueden interactuar con los efectos de las aflatoxinas. en animales.

Alteración de la biodisponibilidad por quimisorbentes de aflatoxinas:

Un nuevo enfoque para la desintoxicación de las aflatoxinas es la adición de materiales absorbentes inorgánicos, conocidos como quimisorbentes, como el aluminosilicato cálcico sódico hidratado (HSCAS) a la dieta de los animales.HSCAS posee la capacidad de unir e inmovilizar fuertemente las aflatoxinas en el tracto gastrointestinal de los animales, lo que resulta en una reducción importante de la biodisponibilidad de las aflatoxinas.

9. Control biológico de aflatoxinas:

Ciegler (1966) después de examinar alrededor de 1000 microorganismos encontró la capacidad de Flavobacterium aurantiacum NRRL B-164 para eliminar la aflatoxina B1 formar solución.

El aceite de maíz con leche y la mantequilla de maní se contaminaron artificialmente con 600, 700 y 700 microgramos de aflatoxina B1 respectivamente, cuando se añadieron cellos viables de Flavobacterium aurantiacum a cada uno de estos alimentos, la concentración de aflatoxina se redujo a aproximadamente 0.

Cuando las células viables se mezclaron con soja, las semillas de maíz y maní contaminadas con aflatoxina se eliminaron por completo del maíz y el maní y aproximadamente el 86% de la soja. El desplazamiento de cepas toxigénicas de A. flavus por cepas toxigénicas es una de las estrategias eficaces.

Esta estrategia es posible debido a la gran variabilidad de los fenotipos de A. flavus en los campos agrícolas y la aparición común de cepas toxigénicas. El uso de bio-fungicidas puede ser una mejor opción para controlar los hongos aflatoxina.

Se ha informado que los extractos de neem bloquean la biosíntesis de aflatoxinas hasta en un 98% (Bhatnagar y McCormic, 1988). Se ha informado que los aceites esenciales de Thymus eriocalyx y Gracinia indica (extracto) inhiben los hongos productores de aflatoxinas y también inhiben la producción de aflatoxinas.


Contenido

La raíz de la yuca es larga y afilada, con una pulpa firme y homogénea encerrada en una corteza desprendible, de aproximadamente 1 mm de espesor, rugosa y marrón por fuera. Los cultivares comerciales pueden tener de 5 a 10 centímetros (2 a 4 pulgadas) de diámetro en la parte superior y alrededor de 15 a 30 cm (6 a 12 pulgadas) de largo. Un haz vascular leñoso corre a lo largo del eje de la raíz. La pulpa puede ser de color blanco tiza o amarillento. Las raíces de yuca son muy ricas en almidón y contienen pequeñas cantidades de calcio (16 mg / 100 g), fósforo (27 mg / 100 g) y vitamina C (20,6 mg / 100 g). [10] Sin embargo, son pobres en proteínas y otros nutrientes. Por el contrario, las hojas de yuca son una buena fuente de proteínas (ricas en lisina), pero deficientes en el aminoácido metionina y posiblemente triptófano. [11]

Poblaciones salvajes de M. esculenta subespecie flabellifolia, que se ha demostrado que es el progenitor de la yuca domesticada, se concentran en el centro-oeste de Brasil, donde probablemente fue domesticada por primera vez no más de 10.000 años antes de Cristo. [12] También se pueden encontrar formas de las especies domesticadas modernas que crecen en estado silvestre en el sur de Brasil. Hacia el 4.600 aC, el polen de mandioca (mandioca) aparece en las tierras bajas del Golfo de México, en el sitio arqueológico de San Andrés. [13] La evidencia directa más antigua del cultivo de yuca proviene de un sitio maya de 1.400 años de antigüedad, Joya de Cerén, en El Salvador. [14] Con su alto potencial alimentario, se había convertido en un alimento básico de las poblaciones nativas del norte de América del Sur, el sur de Mesoamérica y los taínos de las islas del Caribe, que lo cultivaron utilizando una forma de agricultura migratoria de alto rendimiento por época del contacto europeo en 1492. [15] La yuca era un alimento básico de los pueblos precolombinos en las Américas y a menudo se retrata en el arte indígena. El pueblo Moche a menudo representaba la yuca en sus cerámicas. [dieciséis]

Los españoles en su temprana ocupación de las islas del Caribe no querían comer mandioca o maíz, que consideraban insustanciales, peligrosos y poco nutritivos. Preferían mucho los alimentos de España, específicamente el pan de trigo, el aceite de oliva, el vino tinto y la carne, y consideraban que el maíz y la mandioca eran perjudiciales para los europeos. [17] No obstante, el cultivo y el consumo de yuca prosiguieron en la América portuguesa y española. La producción masiva de pan de yuca se convirtió en la primera industria cubana establecida por los españoles. [18] Los barcos que partían hacia Europa desde puertos cubanos como La Habana, Santiago, Bayamo y Baracoa transportaban mercancías a España, pero los marineros necesitaban aprovisionamiento para el viaje. Los españoles también necesitaban reabastecer sus barcos con carne seca, agua, fruta y grandes cantidades de pan de mandioca. [19] Los marineros se quejaron de que les causaba problemas digestivos. [20] El clima tropical cubano no era adecuado para la siembra de trigo y la yuca no se rancia tan rápidamente como el pan común.

La yuca fue introducida en África por comerciantes portugueses de Brasil en el siglo XVI. Aproximadamente en el mismo período, también fue introducido en Asia a través de Columbian Exchange por comerciantes portugueses y españoles, plantados en sus colonias en Goa, Malaca, Indonesia oriental, Timor y Filipinas. El maíz y la mandioca son ahora alimentos básicos importantes que reemplazan a los cultivos nativos africanos en lugares como Tanzania. [21] La yuca también se ha convertido en un cultivo importante en Asia. Si bien es un alimento básico valioso en partes del este de Indonesia, se cultiva principalmente para la extracción de almidón y la producción de biocombustibles en Tailandia, Camboya o Vietnam. [22] La yuca se describe a veces como el "pan de los trópicos" [23], pero no debe confundirse con el árbol del pan tropical y ecuatorial. (Encephalartos), la fruta del pan (Artocarpus altilis) o el fruto del pan africano (Treculia africana). Esta descripción definitivamente se mantiene en África y partes de América del Sur en países asiáticos como Vietnam, la yuca fresca apenas aparece en la dieta humana. [24]

Existe una leyenda que dice que la mandioca fue introducida en 1880-1885 E.C.en el estado de Kerala, en el sur de la India, por el rey de Travancore, Vishakham Thirunal Maharaja, después de que una gran hambruna azotara el reino, como sustituto del arroz. [25] Sin embargo, hay casos documentados de cultivo de yuca en partes del estado antes de la época de Vishakham Thirunal Maharaja. [26] La yuca se llama kappa o maricheeni en malayalam. También se conoce como tapioca en el uso del inglés indio.

En 2018, la producción mundial de raíz de yuca fue de 278 millones de toneladas, con Nigeria como el mayor productor del mundo, con el 21% del total mundial (tabla). Otros productores importantes fueron Tailandia y la República Democrática del Congo. [27]

Producción de yuca - 2018
País Producción (millones de toneladas)
Nigeria 59.5
Tailandia 31.7
República Democrática del Congo 30.0
Brasil 17.6
Indonesia 16.1
Mundo 278
Fuente: FAOSTAT de las Naciones Unidas [27]

La yuca es uno de los cultivos más tolerantes a la sequía, se puede cultivar con éxito en suelos marginales y ofrece rendimientos razonables donde muchos otros cultivos no crecen bien. La yuca está bien adaptada dentro de las latitudes 30 ° al norte y al sur del ecuador, en elevaciones entre el nivel del mar y 2.000 m (7.000 pies) sobre el nivel del mar, en temperaturas ecuatoriales, con precipitaciones de 50 a 5.000 mm (2 a 200 pulgadas) al año. ya suelos pobres con un pH que varía de ácido a alcalino. Estas afecciones son comunes en ciertas partes de África y América del Sur.

La yuca es un cultivo altamente productivo si se consideran las calorías alimentarias producidas por unidad de superficie por día (250.000 cal / hectárea / día, en comparación con 156.000 del arroz, 110.000 del trigo y 200.000 del maíz). [28]

Yuca, ñame (Dioscorea spp.) y batatas (Ipomoea batatas) son importantes fuentes de alimentos en los trópicos. La planta de yuca da el tercer rendimiento más alto de carbohidratos por área cultivada entre las plantas de cultivo, después de la caña de azúcar y la remolacha azucarera. [29] La yuca juega un papel particularmente importante en la agricultura de los países en desarrollo, especialmente en el África subsahariana, porque le va bien en suelos pobres y con escasas precipitaciones, y porque es una planta perenne que se puede cosechar según sea necesario. Su amplia ventana de cosecha le permite actuar como una reserva de hambruna y es invaluable en la gestión de los horarios de mano de obra. Ofrece flexibilidad a los agricultores de escasos recursos porque sirve como cultivo de subsistencia o comercial. [30]

En todo el mundo, 800 millones de personas dependen de la yuca como su principal alimento básico. [31] Ningún continente depende tanto de los cultivos de raíces y tubérculos para alimentar a su población como África. En las áreas húmedas y subhúmedas de África tropical, es un alimento básico primario o un copleto secundario. En Ghana, por ejemplo, la yuca y el ñame ocupan una posición importante en la economía agrícola y contribuyen con alrededor del 46 por ciento del producto interno bruto agrícola. La yuca representa una ingesta calórica diaria del 30 por ciento en Ghana y es cultivada por casi todas las familias agrícolas. La importancia de la yuca para muchos africanos se resume en el nombre de oveja (un idioma que se habla en Ghana, Togo y Benin) para la planta, agbeli, que significa "hay vida".

En Tamil Nadu, India, hay muchas fábricas de procesamiento de yuca a lo largo de la Carretera Nacional 68 entre Thalaivasal y Attur. La yuca se cultiva y consume ampliamente como alimento básico en Andhra Pradesh y Kerala. En Assam es una fuente importante de carbohidratos, especialmente para los nativos de las zonas montañosas.

En la región subtropical del sur de China, la yuca es el quinto cultivo más grande en términos de producción, después del arroz, la batata, la caña de azúcar y el maíz. China es también el mayor mercado de exportación de yuca producida en Vietnam y Tailandia. Más del 60 por ciento de la producción de yuca en China se concentra en una sola provincia, Guangxi, con un promedio de más de siete millones de toneladas anuales.

Bebidas alcohólicas Editar

Las bebidas alcohólicas hechas con mandioca incluyen cauim y tiquira [ ¿Qué lenguaje es este? ] (Brasil), kasiri (Guyana, Surinam), impala (Mozambique), masato (chicha de la Amazonia peruana), parakari o kari (Guyana), nihamanchi (Sudamérica) también conocido como [ ¿Qué lenguaje es este? ] (Ecuador y Perú), ö döi (chicha de yuca, Ngäbe-Bugle, Panamá), sakurá (Brasil, Surinam) y tarul ko [ ¿Qué lenguaje es este? ] (Darjeeling, Sikkim, India).

Edición culinaria

Los platos a base de yuca se consumen ampliamente donde se cultiva la planta, algunos tienen importancia regional, nacional o étnica. [32] La yuca debe cocinarse adecuadamente para desintoxicarla antes de comerla.

La yuca se puede cocinar de muchas formas. La raíz de la variedad dulce tiene un sabor delicado y puede reemplazar a las papas. Se usa en cholent en algunos hogares. [ cita necesaria ] Se puede convertir en una harina que se utiliza en panes, pasteles y galletas. En Brasil, la mandioca desintoxicada se muele y se cocina hasta obtener una comida seca, a menudo dura o crujiente conocida como farofa se utiliza como condimento, se tuesta en mantequilla o se come solo como guarnición.

Nutrición Editar

La yuca cruda contiene un 60% de agua, un 38% de carbohidratos, un 1% de proteínas y una cantidad insignificante de grasa (tabla). [33] En una porción de referencia de 100 gramos (3 + 1 ⁄ 2 onzas), la yuca cruda proporciona 670 kilojulios (160 kilocalorías) de energía alimentaria y el 25% del valor diario (VD) de vitamina C, pero por lo demás no tiene micronutrientes en contenido significativo (es decir, por encima del 10% del VD pertinente). El almidón de yuca cocido tiene una digestibilidad de más del 75%. [33]

La yuca, como otros alimentos, también tiene factores antinutricionales y tóxicos. De particular preocupación son los glucósidos cianogénicos de la yuca (linamarina y lotaustralina). En la hidrólisis, estos liberan cianuro de hidrógeno (HCN). La presencia de cianuro en la yuca es motivo de preocupación para el consumo humano y animal. La concentración de estos glucósidos antinutricionales e inseguros varía considerablemente entre variedades y también con las condiciones climáticas y culturales. La selección de las especies de yuca que se cultivarán, por lo tanto, es muy importante. Una vez recolectada, la yuca amarga debe tratarse y prepararse adecuadamente antes del consumo humano o animal, mientras que la yuca dulce se puede utilizar después de hervir.

Comparación con otros alimentos básicos importantes Editar

Una tabla comparativa muestra que la yuca es una buena fuente de energía. En sus formas preparadas, en las que sus componentes tóxicos o desagradables se han reducido a niveles aceptables, contiene una proporción extremadamente alta de almidón. Sin embargo, en comparación con la mayoría de los alimentos básicos, la yuca es una fuente dietética más pobre de proteínas y la mayoría de los demás nutrientes esenciales. Aunque es un alimento básico importante, su principal valor es como componente de una dieta equilibrada.

Las comparaciones entre el contenido de nutrientes de la yuca y otros alimentos básicos importantes cuando están crudos deben interpretarse con precaución porque la mayoría de los alimentos básicos no son comestibles en tales formas y muchos son indigeribles, incluso peligrosamente venenosos o dañinos de alguna otra manera. [34] Para el consumo, cada uno debe prepararse y cocinarse según corresponda.

Biocombustible Editar

En muchos países, se han iniciado importantes investigaciones para evaluar el uso de la yuca como materia prima para biocombustibles de etanol. En el marco del Plan de Desarrollo de Energías Renovables del Undécimo Plan Quinquenal de la República Popular China, el objetivo era aumentar la producción de combustible de etanol a partir de materias primas distintas de los cereales a dos millones de toneladas y la de biodiésel a 200.000 toneladas para 2010. Esto equivale a la sustitución de 10 millones de toneladas de petróleo. [35] Este impulso por el etanol no proveniente de granos se incrementó aún más hasta alcanzar el objetivo de 300 millones de toneladas de etanol celulósico y no proveniente de granos combinados para 2020. [36] Como resultado, las hojuelas de yuca (tapioca) se han convertido gradualmente en una fuente importante de la producción de etanol. El 22 de diciembre de 2007, se completó en Beihai la mayor instalación de producción de combustible de etanol de yuca, con una producción anual de 200 000 toneladas, que necesitarían un promedio de 1,5 millones de toneladas de yuca. En noviembre de 2008, Hainan Yedao Group, con sede en China, invirtió 51,5 millones de dólares en una nueva instalación de biocombustible que se espera produzca 120 millones de litros (33 millones de galones estadounidenses) al año de bioetanol a partir de plantas de yuca. [37]

Alimentación animal Editar

Los tubérculos de yuca y el heno se utilizan en todo el mundo como alimento para animales. El heno de yuca se cosecha en una etapa de crecimiento joven (tres a cuatro meses) cuando alcanza unos 30 a 45 cm (12 a 18 pulgadas) sobre el suelo y luego se seca al sol durante uno o dos días hasta que su contenido final de materia seca se acerca a 85 por ciento. El heno de yuca contiene alto contenido de proteína (20 a 27 por ciento de proteína cruda) y taninos condensados ​​(1,5 a 4 por ciento de PC). Se valora como una buena fuente de forraje para rumiantes como el ganado. [38]

Almidón de lavandería Editar

La mandioca también se utiliza en varios productos de lavandería disponibles comercialmente, especialmente como almidón para camisas y otras prendas. Usar almidón de mandioca diluido en agua y rociarlo sobre las telas antes de planchar ayuda a endurecer los cuellos.

Toxicidad potencial Editar

Las raíces, cáscaras y hojas de yuca no deben consumirse crudas porque contienen dos glucósidos cianogénicos, linamarina y lotaustralina. Estos se descomponen por la linamarasa, una enzima natural de la yuca, que libera cianuro de hidrógeno (HCN). [39] Las variedades de yuca se clasifican a menudo como dulces o amargas, lo que significa la ausencia o presencia de niveles tóxicos de glucósidos cianogénicos, respectivamente. Los cultivares llamados dulces (en realidad no amargos) pueden producir tan solo 20 miligramos de cianuro (CN) por kilogramo de raíces frescas, mientras que los amargos pueden producir más de 50 veces más (1 g / kg). La yuca cultivada durante la sequía es especialmente rica en estas toxinas. [40] [41] Una dosis de 25 mg de glucósido cianogénico de yuca puro, que contiene 2,5 mg de cianuro, es suficiente para matar una rata. [42] Se sabe que el exceso de residuos de cianuro de una preparación inadecuada causa intoxicación aguda por cianuro y bocio, y se ha relacionado con la ataxia (un trastorno neurológico que afecta la capacidad para caminar, también conocido como Konzo). [6] También se ha relacionado con la pancreatitis cálcica tropical en humanos, lo que lleva a la pancreatitis crónica. [43] [44]

Los síntomas de intoxicación aguda por cianuro aparecen cuatro o más horas después de ingerir yuca cruda o mal procesada: vértigo, vómitos y colapso. En algunos casos, la muerte puede resultar en una o dos horas. Puede tratarse fácilmente con una inyección de tiosulfato (que hace que el azufre esté disponible para que el cuerpo del paciente se desintoxique al convertir el cianuro venenoso en tiocianato). [6]

"La exposición crónica al cianuro de bajo nivel se asocia con el desarrollo de bocio y con la neuropatía atáxica tropical, un trastorno que daña los nervios y que deja a una persona inestable y descoordinada. La intoxicación grave por cianuro, especialmente durante las hambrunas, se asocia con brotes de una enfermedad debilitante, trastorno paralítico irreversible llamado konzo y, en algunos casos, muerte. La incidencia de konzo y neuropatía atáxica tropical puede ser tan alta como tres por ciento en algunas áreas ". [45] [46]

Durante la escasez en Venezuela a fines de la década de 2010, se informaron decenas de muertes debido a que los venezolanos recurrieron a comer yuca amarga para frenar el hambre. [47] [48]

Las sociedades que tradicionalmente comen yuca generalmente entienden que es necesario algún procesamiento (remojo, cocción, fermentación, etc.) para evitar enfermarse. El remojo breve (cuatro horas) de yuca no es suficiente, pero el remojo durante 18 a 24 horas puede eliminar hasta la mitad del nivel de cianuro. Es posible que el secado tampoco sea suficiente. [6]

Para algunas variedades dulces de raíces más pequeñas, la cocción es suficiente para eliminar toda la toxicidad. El cianuro se elimina en el agua de procesamiento y las cantidades producidas en el consumo doméstico son demasiado pequeñas para tener un impacto ambiental. [39] Las variedades amargas de raíces más grandes que se utilizan para la producción de harina o almidón deben procesarse para eliminar los glucósidos cianogénicos. Las raíces grandes se pelan y luego se muelen en harina, que luego se empapa en agua, se exprime varias veces y se tuesta. Los granos de almidón que fluyen con el agua durante el proceso de remojo también se utilizan para cocinar. [49] La harina se utiliza en América del Sur y el Caribe. La producción industrial de harina de yuca, incluso a nivel artesanal, puede generar suficiente cianuro y glucósidos cianogénicos en los efluentes para tener un impacto ambiental severo. [39]

Preparación de alimentos Editar

Un método de procesamiento seguro conocido como "método de humectación" consiste en mezclar la harina de yuca con agua en una pasta espesa, extenderla en una capa delgada sobre una canasta y luego dejarla reposar durante cinco horas a 30 ° C a la sombra. [50] En ese tiempo, aproximadamente el 83% de los glucósidos cianogénicos son degradados por la linamarasa y el cianuro de hidrógeno resultante escapa a la atmósfera, lo que hace que la harina sea segura para el consumo esa misma noche. [50]

El método tradicional utilizado en África Occidental es pelar las raíces y ponerlas en agua durante tres días para que fermenten. Luego, las raíces se secan o se cuecen. En Nigeria y varios otros países de África occidental, incluidos Ghana, Camerún, Benin, Togo, Costa de Marfil y Burkina Faso, generalmente se rallan y se fríen ligeramente en aceite de palma para conservarlos. El resultado es un producto alimenticio llamado gari. La fermentación también se usa en otros lugares como Indonesia (ver Tapai). El proceso de fermentación también reduce el nivel de antinutrientes, haciendo de la yuca un alimento más nutritivo. [51] La dependencia de la yuca como fuente de alimento y la exposición resultante a los efectos bociógenos del tiocianato ha sido responsable de los bocios endémicos observados en la zona de Akoko, en el suroeste de Nigeria. [52] [53]

Un proyecto llamado "BioCassava Plus" utiliza la bioingeniería para cultivar mandioca con glucósidos cianogénicos bajos combinados con la fortificación de vitamina A, hierro y proteínas para mejorar la nutrición de las personas en el África subsahariana. [54] [55]

Cosecha Editar

La yuca se cosecha a mano levantando la parte inferior del tallo, arrancando las raíces del suelo y sacándolas de la base de la planta. Las partes superiores de los tallos con las hojas se arrancan antes de la cosecha. La yuca se propaga cortando el tallo en secciones de aproximadamente 15 cm, que se plantan antes de la temporada de lluvias. [56] El crecimiento de la yuca es favorable a temperaturas que oscilan entre 25 y 29 ° C (77 a 84 ° F), pero puede tolerar temperaturas tan bajas como 12 ° C (54 ° F) y tan altas como 40 ° C (104 ° F). F). [57]

Manejo y almacenamiento poscosecha Editar

Procesamiento de almidón de yuca

Procesamiento de harina de almidón de yuca

Procesamiento húmedo de almidón de yuca

Extensión Casabe burrero (pan de yuca) para secar, Venezuela

Almidón de yuca en preparación para el envasado

Almidón de mandioca envasado y listo para enviar

Hojas de mandioca congeladas en un mercado de Los Ángeles

La yuca sufre un deterioro fisiológico poscosecha (PPD) una vez que los tubérculos se separan de la planta principal. Los tubérculos, cuando están dañados, normalmente responden con un mecanismo de curación. Sin embargo, el mismo mecanismo, que involucra los ácidos cumaricos, comienza unos 15 minutos después del daño y no se apaga en los tubérculos cosechados. Continúa hasta que todo el tubérculo se oxida y se ennegrece dentro de los dos o tres días posteriores a la cosecha, lo que lo vuelve desagradable e inútil. El PPD está relacionado con la acumulación de especies reactivas de oxígeno (ROS) iniciadas por la liberación de cianuro durante la recolección mecánica. La vida útil de la yuca se puede aumentar hasta tres semanas al sobreexpresar una oxidasa alternativa insensible al cianuro, que suprimió las ROS en 10 veces. [58] El PPD es uno de los principales obstáculos que impide a los agricultores exportar yuca al exterior y generar ingresos. La yuca fresca se puede conservar como la papa, usando tiabendazol o lejía como fungicida, luego envolver en plástico, cubrir con cera o congelar. [59]

Si bien se han propuesto métodos alternativos para el control de PPD, como prevenir los efectos de ROS mediante el uso de bolsas de plástico durante el almacenamiento y transporte, recubrir las raíces con cera o congelar las raíces, tales estrategias han demostrado ser económica o técnicamente imprácticas, lo que lleva a la reproducción de variedades de yuca más tolerantes al PPD y con mayor durabilidad después de la cosecha. [60] El fitomejoramiento ha dado lugar a diferentes estrategias para la tolerancia de la yuca al PPD. [60] [61] Uno fue inducido por niveles mutagénicos de rayos gamma, que supuestamente silenciaron uno de los genes involucrados en la génesis del PPD, mientras que otro fue un grupo de clones ricos en caroteno en los que se postulan las propiedades antioxidantes de los carotenoides para proteger el raíces de PPD. [61]

Plagas Editar

Una de las principales causas de pérdidas durante el almacenamiento de la yuca es la infestación por insectos. [62] Se ha informado de una amplia gama de especies que se alimentan directamente de chips de yuca seca como un factor importante en el deterioro de la yuca almacenada, con pérdidas entre el 19% y el 30% del producto cosechado. [62] En África, un problema anterior fue la cochinilla de la yuca (Phenacoccus manihoti) y ácaro verde de la yuca (Mononychellus tanajoa). Estas plagas pueden causar hasta un 80 por ciento de pérdida de cultivos, lo que es extremadamente perjudicial para la producción de los agricultores de subsistencia. Estas plagas proliferaron en los años setenta y ochenta, pero fueron controladas tras el establecimiento del "Centro de control biológico para África" ​​del Instituto Internacional de Agricultura Tropical (IITA) bajo la dirección de Hans Rudolf Herren. [63] El Centro investigó el control biológico de las plagas de la yuca, dos enemigos naturales de América del Sur. Anagyrus lopezi (una avispa parasitoide) y Typhlodromalus aripo (un ácaro depredador) controlan eficazmente la cochinilla de la yuca y el ácaro verde de la yuca, respectivamente.

El virus del mosaico africano de la yuca hace que las hojas de la yuca se marchiten, lo que limita el crecimiento de la raíz. [64] Un brote del virus en África en la década de 1920 provocó una gran hambruna. [65] El virus se transmite por la mosca blanca y por el trasplante de plantas enfermas a nuevos campos. En algún momento a fines de la década de 1980, se produjo una mutación en Uganda que hizo que el virus fuera aún más dañino, provocando la pérdida completa de hojas. Este virus mutado se propagó a una velocidad de 80 kilómetros (50 millas) por año y, en 2005, se encontró en Uganda, Ruanda, Burundi, la República Democrática del Congo y la República del Congo. [66]

La enfermedad por el virus de la estría marrón de la yuca se ha identificado como una gran amenaza para el cultivo en todo el mundo. [sesenta y cinco]

Se ha informado de una amplia gama de nematodos fitoparásitos asociados con la yuca en todo el mundo. Éstos incluyen Pratylenchus brachyurus, Rotylenchulus reniformis, Helicotylenchus spp., Scutellonema spp. y Meloidogyne spp., de las cuales Meloidogyne incognita y Meloidogyne javanica son los más ampliamente reportados y económicamente importantes. [67] Meloidogyne spp. la alimentación produce agallas físicamente dañinas con huevos en su interior. Las agallas luego se fusionan a medida que las hembras crecen y se agrandan, e interfieren con el suministro de agua y nutrientes. [68] Las raíces de la yuca se endurecen con la edad y restringen el movimiento de los juveniles y la liberación de huevos. Por lo tanto, es posible que se pueda observar una irritación extensa incluso a bajas densidades después de la infección. [69] Otras plagas y enfermedades pueden ingresar a través del daño físico causado por la formación de agallas, lo que lleva a la pudrición. No se ha demostrado que causen daño directo a las raíces de almacenamiento agrandadas, pero las plantas pueden tener una altura reducida si se pierde el peso de la raíz agrandada. [70]

La investigación sobre las plagas de nematodos de la yuca se encuentra todavía en las primeras etapas; por lo tanto, los resultados sobre la respuesta de la yuca no son consistentes y van desde insignificantes hasta muy dañinos. [71] [72] [68] [73] Dado que los nematodos tienen una distribución aparentemente errática en los campos agrícolas de yuca, no es fácil definir claramente el nivel de daño directo atribuido a los nematodos y luego cuantificar el éxito de un método de manejo elegido. . [69]

Se ha encontrado que el uso de nematicidas da como resultado un menor número de agallas por raíz de alimentación en comparación con un control, junto con un menor número de pudriciones en las raíces de almacenamiento. [74] El nematicida organofosforado femaniphos, cuando se usó, no afectó el crecimiento del cultivo ni las variables de los parámetros de rendimiento medidos en la cosecha. El uso de nematicidas en la yuca no es práctico ni sostenible; el uso de cultivares tolerantes y resistentes es el método de manejo más práctico y sostenible. [69] [75]


Métodos de polinización

Polinización por insectos

Figura 1. Los insectos, como las abejas, son agentes importantes de polinización. (crédito: modificación del trabajo de Jon Sullivan)

Las abejas son quizás el polinizador más importante de muchas plantas de jardín y la mayoría de los árboles frutales comerciales (Figura 1). Las especies de abejas más comunes son los abejorros y las abejas. Dado que las abejas no pueden ver el color rojo, las flores polinizadas por abejas suelen tener tonos de azul, amarillo u otros colores. Las abejas recolectan polen o néctar ricos en energía para su supervivencia y necesidades energéticas. Visitan flores que están abiertas durante el día, son de colores brillantes, tienen un aroma o olor fuerte y tienen una forma tubular, típicamente con la presencia de una guía de néctar. A guía de néctar incluye regiones en los pétalos de la flor que son visibles solo para las abejas, y no para los humanos, ayuda a guiar a las abejas al centro de la flor, lo que hace que el proceso de polinización sea más eficiente. El polen se adhiere al pelo difuso de las abejas, y cuando la abeja visita otra flor, parte del polen se transfiere a la segunda flor. Recientemente, ha habido muchos informes sobre la disminución de la población de abejas. Muchas flores permanecerán sin polinizar y no darán semillas si las abejas desaparecen. El impacto en los productores comerciales de frutas podría ser devastador.

Muchas moscas se sienten atraídas por las flores que tienen un olor a descomposición o un olor a carne podrida. Estas flores, que producen néctar, suelen tener colores apagados, como el marrón o el morado. Se encuentran en la flor del cadáver o en el lirio vudú (Amorphophallus), dragón arum (Dracunculus) y flor de carroña (Stapleia, Rafflesia). El néctar proporciona energía, mientras que el polen proporciona proteínas. Las avispas también son importantes insectos polinizadores y polinizan muchas especies de higos.

Figura 2. Un gusano espiga del maíz sorbe el néctar de una planta Gaura que florece de noche. (crédito: Juan Lopez, USDA ARS)

Las mariposas, como la monarca, polinizan muchas flores de jardín y flores silvestres, que generalmente ocurren en racimos. Estas flores son de colores brillantes, tienen una fragancia fuerte, están abiertas durante el día y tienen guías de néctar para facilitar el acceso al néctar. El polen se recoge y se transporta en las extremidades de la mariposa. Las polillas, por otro lado, polinizan las flores durante la tarde y la noche. Las flores polinizadas por las polillas son pálidas o blancas y planas, lo que permite a las polillas aterrizar. Un ejemplo bien estudiado de una planta polinizada por polillas es la planta de yuca, que es polinizada por la polilla de la yuca. La forma de la flor y la polilla se han adaptado de tal manera que permiten una polinización exitosa. La polilla deposita polen en el estigma pegajoso para que la fertilización ocurra más tarde. La polilla hembra también deposita huevos en el ovario. A medida que los huevos se convierten en larvas, obtienen alimento de la flor y semillas en desarrollo. Por lo tanto, tanto el insecto como la flor se benefician el uno del otro en esta relación simbiótica. La polilla del gusano del maíz y la planta Gaura tienen una relación similar (Figura 2).

Polinización por murciélagos

En los trópicos y desiertos, los murciélagos son a menudo los polinizadores de flores nocturnas como el agave, la guayaba y la gloria de la mañana. Las flores suelen ser grandes y blancas o de color pálido, por lo que se pueden distinguir del entorno oscuro por la noche. Las flores tienen una fragancia fuerte, afrutada o almizclada y producen grandes cantidades de néctar. Son naturalmente grandes y de boca ancha para acomodar la cabeza del murciélago. A medida que los murciélagos buscan el néctar, sus caras y cabezas se cubren de polen, que luego se transfiere a la siguiente flor.

Polinización por aves

Figura 3. Los colibríes tienen adaptaciones que les permiten alcanzar el néctar de ciertas flores tubulares. (crédito: Lori Branham)

Muchas especies de pájaros pequeños, como el colibrí (Figura 3) y los pájaros del sol, son polinizadores de plantas como las orquídeas y otras flores silvestres. Las flores visitadas por las aves suelen ser robustas y están orientadas de tal manera que permiten que las aves permanezcan cerca de la flor sin que sus alas se enreden en las flores cercanas. La flor generalmente tiene una forma tubular curva, lo que permite el acceso del pico del ave. Las flores de colores brillantes e inodoros que están abiertas durante el día son polinizadas por pájaros. Cuando un pájaro busca un néctar rico en energía, el polen se deposita en la cabeza y el cuello del ave y luego se transfiere a la siguiente flor que visita. Se sabe que los botánicos determinan el rango de plantas extintas recolectando e identificando polen de especímenes de aves de 200 años del mismo sitio.

Polinización por viento

Figura 4. Una persona golpea el polen de un pino.

La mayoría de las especies de coníferas y muchas angiospermas, como pastos, arces y robles, son polinizadas por el viento. Los conos de pino son marrones y sin perfume, mientras que las flores de las especies de angiospermas polinizadas por el viento suelen ser verdes, pequeñas, pueden tener pétalos pequeños o no tenerlos y producen grandes cantidades de polen. A diferencia de las típicas flores polinizadas por insectos, las flores adaptadas a la polinización por el viento no producen néctar ni olor. En las especies polinizadas por el viento, los microsporangios cuelgan de la flor y, a medida que sopla el viento, el polen liviano se lleva consigo (Figura 4).

Las flores suelen emerger a principios de la primavera, antes que las hojas, para que las hojas no bloqueen el movimiento del viento. El polen se deposita sobre el estigma plumoso expuesto de la flor (Figura 5).

Figura 5. Estos amentos masculinos (a) y femeninos (b) son del sauce cabrío (Salix caprea). Observe cómo ambas estructuras son ligeras y plumosas para dispersar y atrapar mejor el polen arrastrado por el viento.

Polinización por agua

Algunas malas hierbas, como la hierba marina australiana y las malas hierbas de los estanques, son polinizadas por el agua. El polen flota en el agua y cuando entra en contacto con la flor, se deposita dentro de la flor.

Polinización por engaño

Figura 6. Algunas orquídeas utilizan el engaño alimenticio o el engaño sexual para atraer a los polinizadores. Aquí se muestra una orquídea abeja (Ophrys apifera). (crédito: David Evans)

Las orquídeas son flores muy apreciadas, con muchas variedades raras (Figura 6). Crecen en una variedad de hábitats específicos, principalmente en los trópicos de Asia, América del Sur y América Central. Se han identificado al menos 25.000 especies de orquídeas.

Las flores a menudo atraen a los polinizadores con recompensas alimentarias, en forma de néctar. Sin embargo, algunas especies de orquídeas son una excepción a este estándar: han desarrollado diferentes formas de atraer a los polinizadores deseados. Utilizan un método conocido como engaño alimenticio, en el que se ofrecen colores brillantes y perfumes, pero no comida. Anacamptis morio, comúnmente conocida como la orquídea de alas verdes, tiene flores de color púrpura brillante y emite un olor fuerte. El abejorro, su principal polinizador, se siente atraído por la flor debido al fuerte olor, que generalmente indica alimento para una abeja, y en el proceso, recoge el polen para transportarlo a otra flor.

Otras orquídeas utilizan el engaño sexual. Chiloglotis trapeziforme emite un compuesto que huele igual que la feromona que emite una avispa hembra para atraer a los machos. La avispa macho se siente atraída por el olor, aterriza en la flor de la orquídea y, en el proceso, transfiere el polen. Algunas orquídeas, como la orquídea martillo australiana, utilizan aromas y trucos visuales en otra estrategia de engaño sexual para atraer avispas. La flor de esta orquídea imita la apariencia de una avispa hembra y emite una feromona. La avispa macho intenta aparearse con lo que parece ser una avispa hembra y, en el proceso, recoge polen, que luego transfiere a la siguiente pareja falsificada.


Cómo identificar las verrugas

Heather Richmond, MD es coautor (a) de este artículo. La Dra. Heather Richmond, MD es una dermatóloga certificada por la junta en el Centro de Dermatología y Cirugía Láser en Houston, Texas. Con más de nueve años de experiencia, el Dr. Richmond se especializa en dermatología integral que incluye procedimientos médicos, quirúrgicos y cosméticos. Se graduó con honores de la Universidad de Yale con una licenciatura en Biología Molecular, Celular y del Desarrollo. Obtuvo su doctorado en medicina en la Facultad de Medicina de Irvine de la Universidad de California, donde fue incorporada a la Sociedad Médica de Honor Alpha Omega Alpha. Completó su pasantía en Medicina Interna en el Centro Médico Cedars-Sinai y su residencia en Dermatología en el Centro Oncológico MD Anderson de la Universidad de Texas en Houston. El Dr. Richmond es miembro de la Academia Estadounidense de Dermatología y miembro de la Sociedad Estadounidense de Cirugía Dermatológica, la Sociedad Estadounidense de Medicina y Cirugía Láser y las Sociedades Dermatológicas de Texas y Houston.

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Las verrugas pueden parecer extrañas o vergonzosas, pero son un problema cutáneo común y tratable. Si notó una protuberancia o un grupo de crecimientos inusuales, verifique el tamaño, la forma, la textura y el color. A diferencia de las ampollas o los granos, las verrugas no están llenas de líquido y se sienten carnosas y duras. Por lo general, no notará ningún síntoma a menos que la verruga esté en un área de soporte de peso, como sus pies. Las verrugas también crecen lentamente, por lo que cualquier bulto que se desarrolló de repente probablemente no sea una verruga. Dado que son causados ​​por virus y pueden propagarse fácilmente, lávese las manos después de examinar una verruga sospechosa y evite tocarla o rascarla.


Características y rasgos

Las siete características que Mendel evaluó en sus plantas de guisantes se expresaron cada una como una de dos versiones, o rasgos. La expresión física de las características se logra mediante la expresión de genes que se encuentran en los cromosomas. La composición genética de los guisantes consta de dos copias similares u homólogas de cada cromosoma, una de cada padre. Cada par de cromosomas homólogos tiene el mismo orden lineal de genes. En otras palabras, los guisantes son organismos diploides porque tienen dos copias de cada cromosoma. Lo mismo es cierto para muchas otras plantas y para prácticamente todos los animales. Los organismos diploides utilizan la meiosis para producir gametos haploides, que contienen una copia de cada cromosoma homólogo que se unen en la fertilización para crear un cigoto diploide.

Para los casos en los que un solo gen controla una sola característica, un organismo diploide tiene dos copias genéticas que pueden o no codificar la misma versión de esa característica. Las variantes genéticas que surgen por mutación y existen en las mismas ubicaciones relativas en los cromosomas homólogos se denominan alelos. Mendel examinó la herencia de genes con solo dos formas de alelos, pero es común encontrar más de dos alelos para cualquier gen dado en una población natural.

Fenotipos y genotipos

Dos alelos de un gen dado en un organismo diploide se expresan e interactúan para producir características físicas. Los rasgos observables expresados ​​por un organismo se conocen como su fenotipo. La estructura genética subyacente de un organismo, que consta de alelos físicamente visibles y no expresados, se llama su genotipo. Los experimentos de hibridación de Mendel & # 8217s demuestran la diferencia entre fenotipo y genotipo. Cuando las plantas de reproducción verdadera en las que uno de los padres tenía vainas amarillas y el otro tenía vainas verdes se fertilizaron de forma cruzada, todas las F1 la descendencia híbrida tenía vainas amarillas. Es decir, la descendencia híbrida era fenotípicamente idéntica a la del progenitor de verdadera reproducción con vainas amarillas. Sin embargo, sabemos que el alelo donado por el padre con vainas verdes no se perdió simplemente porque reapareció en algunos de los F2 descendencia. Por lo tanto, la F1 las plantas deben haber sido genotípicamente diferentes del padre con vainas amarillas.

La P0 Las plantas que Mendel usó en sus experimentos eran homocigotas para el rasgo que estaba estudiando. Organismos diploides que son homocigoto en un gen o locus dado, tienen dos alelos idénticos para ese gen en sus cromosomas homólogos. Las plantas de guisantes parentales de Mendel # 8217 siempre se reprodujeron verdaderas porque ambos gametos producidos tenían el mismo rasgo. Cuando p0 las plantas con rasgos contrastantes se fertilizaron de forma cruzada, toda la descendencia era heterocigótica para el rasgo contrastante, lo que significa que su genotipo reflejaba que tenían alelos diferentes para el gen que se estaba examinando.

Alelos dominantes y recesivos

Nuestra discusión de organismos homocigotos y heterocigotos nos lleva a por qué la F1 la descendencia heterocigótica era idéntica a uno de los padres, en lugar de expresar ambos alelos. En las siete características de la planta de guisantes, uno de los dos alelos contrastantes fue dominante y el otro fue recesivo. Mendel llamó al alelo dominante el factor unitario expresado; el alelo recesivo se denominó factor unitario latente.Ahora sabemos que estos denominados factores unitarios son en realidad genes en pares de cromosomas homólogos. Para un gen que se expresa en un patrón dominante y recesivo, los organismos homocigotos dominantes y heterocigotos se verán idénticos (es decir, tendrán diferentes genotipos pero el mismo fenotipo). El alelo recesivo solo se observará en individuos homocigotos recesivos (Tabla 4).

Tabla 4. Herencia humana en patrones dominantes y recesivos
Rasgos dominantes Rasgos recesivos
Acondroplasia Albinismo
Braquidactilia Fibrosis quística
Enfermedad de Huntington y # 8217s Distrofia muscular de Duchenne
síndrome de Marfan Galactosemia
Neurofibromatosis Fenilcetonuria
Viuda & # 8217s pico Anemia falciforme
Pelo lanudo enfermedad de Tay-Sachs

Existen varias convenciones para referirse a genes y alelos. Para los propósitos de este capítulo, abreviaremos genes usando la primera letra del rasgo dominante correspondiente del gen. Por ejemplo, el violeta es el rasgo dominante de una planta de guisantes y el color de la flor # 8217s, por lo que el gen del color de la flor se abreviaría como V (tenga en cuenta que es costumbre poner en cursiva las designaciones de genes). Además, usaremos letras mayúsculas y minúsculas para representar alelos dominantes y recesivos, respectivamente. Por lo tanto, nos referiríamos al genotipo de una planta de guisante dominante homocigótica con flores violetas como VV, una planta de guisante homocigota recesiva con flores blancas como vv, y una planta de guisantes heterocigotos con flores violetas como Vv.

El enfoque de Punnett Square para un cruce monohíbrido

Cuando la fertilización se produce entre dos progenitores reproductores que difieren en una sola característica, el proceso se denomina monohíbrido cruz, y la descendencia resultante son monohíbridos. Mendel realizó siete cruces monohíbridos con rasgos contrastantes para cada característica. Sobre la base de sus resultados en F1 y F2 generaciones, Mendel postuló que cada padre en el cruce monohíbrido contribuía con uno de los dos factores unitarios emparejados a cada descendencia, y que todas las combinaciones posibles de factores unitarios eran igualmente probables.

Para demostrar un cruce monohíbrido, considere el caso de plantas de guisantes de reproducción auténtica con semillas de guisantes amarillas versus verdes. El color dominante de la semilla es amarillo, por lo tanto, los genotipos parentales fueron YY para las plantas con semillas amarillas y aa para las plantas con semillas verdes, respectivamente. A plaza punnett, ideado por el genetista británico Reginald Punnett, se puede dibujar que aplica las reglas de probabilidad para predecir los posibles resultados de un cruce genético o apareamiento y sus frecuencias esperadas. Para preparar un cuadro de Punnett, todas las combinaciones posibles de los alelos parentales se enumeran a lo largo de la parte superior (para uno de los padres) y al lado (para el otro padre) de una cuadrícula, lo que representa su segregación meiótica en gametos haploides. Luego, las combinaciones de óvulo y esperma se hacen en los recuadros de la tabla para mostrar qué alelos se combinan. Luego, cada cuadro representa el genotipo diploide de un cigoto, o huevo fertilizado, que podría resultar de este apareamiento. Debido a que cada posibilidad es igualmente probable, las proporciones genotípicas se pueden determinar a partir de un cuadrado de Punnett. Si se conoce el patrón de herencia (dominante o recesivo), también se pueden inferir las proporciones fenotípicas. Para un cruce monohíbrido de dos padres reproductores verdaderos, cada padre contribuye con un tipo de alelo. En este caso, solo es posible un genotipo. Toda la descendencia es Yy y tienen semillas amarillas (Figura 4).

Figura 4. En la P0 generación, las plantas de guisantes que son auténticas para el fenotipo amarillo dominante se cruzan con plantas con el fenotipo verde recesivo. Esta cruz produce F1 heterocigotos con un fenotipo amarillo. El análisis del cuadrado de Punnett se puede utilizar para predecir los genotipos de F2 Generacion.

Una auto-cruz de uno de los Yy La descendencia heterocigótica se puede representar en un cuadrado de Punnett de 2 × 2 porque cada padre puede donar uno de dos alelos diferentes. Por lo tanto, la descendencia puede tener potencialmente una de cuatro combinaciones de alelos: YY, Yy, yY, o aa (Figura 4). Observe que hay dos formas de obtener el Yy genotipo: a Y del huevo y un y del esperma, o un y del huevo y un Y del esperma. Deben contarse ambas posibilidades. Recuerde que las características de la planta de guisantes de Mendel & # 8217 se comportaron de la misma manera en cruces recíprocos. Por lo tanto, las dos posibles combinaciones heterocigotas producen descendientes que son genotípicamente y fenotípicamente idénticos a pesar de que sus alelos dominantes y recesivos derivan de diferentes padres. Están agrupados. Debido a que la fertilización es un evento aleatorio, esperamos que cada combinación sea igualmente probable y que la descendencia exhiba una proporción de YY:Yy:aa genotipos de 1: 2: 1 (Figura 4). Además, debido a que YY y Yy las crías tienen semillas amarillas y son fenotípicamente idénticas, aplicando la regla de la probabilidad de la suma, esperamos que la descendencia exhiba una proporción fenotípica de 3 amarillas: 1 verde. De hecho, al trabajar con muestras de gran tamaño, Mendel observó aproximadamente esta relación en cada F2 generación resultante de cruces de rasgos individuales.

Mendel validó estos resultados realizando una F3 cruz en la que se cruzó a sí mismo con la expresión dominante y recesiva F2 plantas. Cuando autocruzó las plantas que expresaban semillas verdes, toda la descendencia tenía semillas verdes, lo que confirma que todas las semillas verdes tenían genotipos homocigotos de aa. Cuando se auto-cruzó la F2 plantas que expresan semillas amarillas, descubrió que un tercio de las plantas se reproducen correctamente y dos tercios de las plantas se segregan en una proporción de 3: 1 de semillas amarillas: verdes. En este caso, las plantas reproductoras verdaderas tenían homocigotas (YY) genotipos, mientras que las plantas segregantes correspondían a las heterocigotas (Yy) genotipo. Cuando estas plantas se autofecundaron, el resultado fue como el F1 cruz autofertilizante.

La prueba cruzada distingue el fenotipo dominante

Más allá de predecir la descendencia de un cruce entre padres homocigotos o heterocigotos conocidos, Mendel también desarrolló una forma de determinar si un organismo que expresaba un rasgo dominante era un heterocigoto o un homocigoto. Esta técnica, denominada cruz de prueba, todavía la utilizan los criadores de plantas y animales. En un cruce de prueba, el organismo de expresión dominante se cruza con un organismo que es homocigoto recesivo para la misma característica. Si el organismo de expresión dominante es un homocigoto, entonces todos los F1 la descendencia será heterocigota que expresará el rasgo dominante (Figura 5). Alternativamente, si el organismo de expresión dominante es un heterocigoto, el F1 la descendencia exhibirá una proporción 1: 1 de heterocigotos y homocigotos recesivos (Figura 5). La prueba cruzada valida aún más el postulado de Mendel & # 8217 de que los pares de factores unitarios se segregan por igual.

Pregunta de práctica

Figura 5. Se puede realizar un cruce de prueba para determinar si un organismo que expresa un rasgo dominante es un homocigoto o un heterocigoto.

En las plantas de guisantes, los guisantes redondos (R) son dominantes sobre los guisantes arrugados (r). Realiza un cruce de prueba entre una planta de guisantes con guisantes arrugados (genotipo rr) y una planta de genotipo desconocido que tiene guisantes redondos. Terminas con tres plantas, todas con guisantes redondos. A partir de estos datos, ¿puede saber si la planta madre del guisante redondo es homocigótica dominante o heterocigota? Si la planta madre del guisante redondo es heterocigótica, ¿cuál es la probabilidad de que una muestra aleatoria de 3 guisantes de la progenie sea redonda?

Muchas enfermedades humanas se heredan genéticamente. Una persona sana en una familia en la que algunos miembros padecen un trastorno genético recesivo puede querer saber si tiene el gen que causa la enfermedad y qué riesgo existe de transmitir el trastorno a su descendencia. Por supuesto, hacer una prueba cruzada en humanos no es ético ni práctico. En cambio, los genetistas utilizan el análisis de pedigrí para estudiar el patrón de herencia de las enfermedades genéticas humanas (Figura 6).

Pregunta de práctica

Figura 6. Análisis de pedigrí para alcaptonuria

La alcaptonuria es un trastorno genético recesivo en el que dos aminoácidos, fenilalanina y tirosina, no se metabolizan adecuadamente. Las personas afectadas pueden tener la piel oscurecida y la orina marrón, y pueden sufrir daños en las articulaciones y otras complicaciones. En este árbol genealógico, las personas con el trastorno se indican en azul y tienen el genotipo aa. Los individuos no afectados se indican en amarillo y tienen el genotipo AA o Aa. Tenga en cuenta que a menudo es posible determinar el genotipo de una persona a partir del genotipo de su descendencia. Por ejemplo, si ninguno de los padres tiene el trastorno, pero su hijo sí, deben ser heterocigotos. Dos individuos del pedigrí tienen un fenotipo no afectado pero un genotipo desconocido. Debido a que no tienen el trastorno, deben tener al menos un alelo normal, por lo que su genotipo obtiene la designación & # 8220A? & # 8221.

¿Cuáles son los genotipos de los individuos etiquetados como 1, 2 y 3?


Introducción e impactos

El pimentero brasileño es originario de Argentina, Paraguay y Brasil. La especie fue traída a Florida a mediados de 1800 para su uso como planta ornamental. Sus frutos rojos brillantes y su follaje verde brillante se utilizan con frecuencia como decoración navideña.

Esta especie es una maleza leñosa agresiva. Desplaza la vegetación nativa e invade rápidamente los sitios perturbados. Tiene una alta tasa de crecimiento, amplia tolerancia ambiental, es un prolífico productor de semillas, tiene una alta tasa de germinación, produce plántulas tolerantes a la sombra y tiene la capacidad de formar densos matorrales.

Estados donde se produce el pimentero brasileño.

Cortesía de EDDMapS. 2018. Sistema de mapeo de distribución de amplificador y detección temprana. La Universidad de Georgia - Centro de Especies Invasoras y Salud del Ecosistema.


¿Alguien puede identificar esta flor brasileña? - biología

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Investigación en ciencias de las plantas: Raleigh, NC

Efectos de la contaminación del aire por ozono en las plantas

Incursión del ozono ambiental a las judías verdes sensibles y tolerantes


Daño por ozono en una hoja de calabaza
El ozono a nivel del suelo causa más daño a las plantas que todos los demás contaminantes del aire combinados. Esta página web describe la situación de la contaminación por ozono, muestra los síntomas clásicos de daño por ozono y muestra cómo el ozono afecta el rendimiento de varios cultivos importantes.

Contaminación por ozono troposférico

El ozono se forma en la troposfera cuando la luz solar provoca reacciones fotoquímicas complejas que involucran óxidos de nitrógeno (NOx), hidrocarburos orgánicos volátiles (COV) y monóxido de carbono que se originan principalmente en motores de gasolina y quema de otros combustibles fósiles. La vegetación leñosa es otra fuente importante de COV. Los NOx y los COV pueden ser transportados a largas distancias por patrones climáticos regionales antes de que reaccionen para crear ozono en la atmósfera, donde puede persistir durante varias semanas.

Las exposiciones estacionales en elevaciones bajas consisten en días en que las concentraciones de ozono son relativamente bajas o promedio, puntuadas por días en los que las concentraciones son altas. Las concentraciones de ozono son más altas durante los días tranquilos, soleados, primaverales y estivales, cuando están presentes los contaminantes primarios de las zonas urbanas. Las concentraciones de ozono en las áreas rurales pueden ser más altas que en las áreas urbanas, mientras que los niveles de ozono en las elevaciones pueden ser relativamente constantes durante el día y la noche.


Media estacional de concentraciones de ozono ambiental entre las 09:00 y las 16:00 h en los Estados Unidos continentales del 1 de julio al 31 de septiembre de 2005 (Tong et al. 2007Atmos. Environ. 41: 8772). Las áreas que se muestran en marrón, naranja y rojo pueden experimentar una pérdida significativa de rendimiento de los cultivos y daños a la función del ecosistema debido al ozono ambiental.

Descripción de la lesión por ozono

El ozono ingresa a las hojas a través de los estomas durante el intercambio normal de gases. Como oxidante fuerte, el ozono (o los productos secundarios resultantes de la oxidación por el ozono, como las especies reactivas del oxígeno) causa varios tipos de síntomas que incluyen clorosis y necrosis. Es casi imposible decir si la clorosis foliar o la necrosis en el campo son causadas por el ozono o por la senescencia normal. Sin embargo, varios tipos de síntomas adicionales se asocian comúnmente con la exposición al ozono. Estos incluyen motas (pequeñas manchas irregulares de color bronceado claro de menos de 1 mm de diámetro), punteados (pequeñas áreas de pigmentación oscura de aproximadamente 2-4 mm de diámetro), bronceado y enrojecimiento.

Los síntomas del ozono generalmente ocurren entre las venas en la superficie superior de la hoja de las hojas más viejas y de mediana edad, pero también pueden afectar ambas superficies de las hojas (bifaciales) para algunas especies. El tipo y la gravedad de la lesión dependen de varios factores, incluida la duración y concentración de la exposición al ozono, las condiciones climáticas y la genética de las plantas. Uno o todos estos síntomas pueden ocurrir en algunas especies bajo ciertas condiciones, y los síntomas específicos en una especie pueden diferir de los síntomas en otra. Con la exposición diaria continua al ozono, los síntomas clásicos (punteado, moteado, bronceado y enrojecimiento) se oscurecen gradualmente por la clorosis y la necrosis.

Los estudios en cámaras de campo abiertas han verificado repetidamente que las manchas, el punteado, el bronceado y el enrojecimiento de las hojas de las plantas son respuestas clásicas a los niveles ambientales de ozono. Las plantas que crecen en cámaras que reciben aire filtrado con carbón activado para reducir las concentraciones de ozono no desarrollan los síntomas que ocurren en las plantas que crecen en aire no filtrado a concentraciones de ozono ambiental. Los síntomas foliares que se muestran en este sitio web se produjeron principalmente en plantas expuestas a concentraciones ambientales de ozono.

Pérdida de rendimiento causada por el ozono

La investigación de campo para medir los efectos de la exposición estacional al ozono en el rendimiento de los cultivos ha estado en progreso durante más de 40 años. La mayor parte de esta investigación utilizó cámaras de campo abiertas en las que las condiciones de crecimiento son similares a las condiciones externas. La investigación más extensa sobre la pérdida de cultivos se realizó entre 1980 y 1987 en cinco lugares de los EE. UU. Como parte de la Red Nacional de Evaluación de Pérdidas de Cultivos (NCLAN). En cada lugar, se utilizaron numerosas cámaras para exponer las plantas a tratamientos con ozono que abarcan el rango de concentraciones que ocurren en diferentes áreas del mundo. El NCLAN se centró en los cultivos agronómicos más importantes a nivel nacional.

La evidencia más sólida de los efectos significativos del ozono en el rendimiento de los cultivos proviene de los estudios de NCLAN (Heagle 1989). Los resultados muestran que las especies de dicotiledóneas (soja, algodón y maní) son más sensibles a la pérdida de rendimiento causada por el ozono que las especies de monocotiledóneas (sorgo, maíz de campo y trigo de invierno).

Ainsworth EA, A Rogers, ADB Leakey. 2008. Metas para la biotecnología de cultivos en un futuro mundo alto en CO 2 y alto en O 3. Fisiología vegetal, 147: 13-19.

Bell, JNB y M Treshow. 2002. Contaminación del aire y vida vegetal. 2ª ed. Cinchester: John Wiley & Sons, Inc. 465 págs.

Booker, FL, R Muntifering, M McGrath, KO Burkey, D Decoteau, EL Fiscus, W Manning, S Krupa, A Chappelka, DA Grantz. 2009. El componente de ozono del cambio global: efectos potenciales sobre el rendimiento de las plantas agrícolas y hortícolas, la calidad del producto y las interacciones con las especies invasoras. Journal of Integrative Plant Biology 51: 337-351.

Fiscus, EL, FL Booker, KO Burkey. 2005. Respuestas de los cultivos al ozono: absorción, modos de acción, asimilación y reparto del carbono. Plant, Cell and Environment 28: 997-1011.

Fishman, J, JK Creilson, PA Parker, EA Ainsworth, GG Vining, J Szarka, FL Booker y X Xu. 2010. Una investigación del daño generalizado del ozono a la cosecha de soja en el medio oeste superior determinado a partir de mediciones terrestres y satelitales. Ambiente atmosférico 44: 2248-2256.

Heagle, AS. 1989. Ozono y rendimiento de cultivos. Revisión anual de fitopatología 27: 397-423.

Diablos, WW, AS Heagle, DS Shriner. 1986. Efectos sobre la vegetación: nativos, cultivos, bosques. En: Contaminación del aire. 3ª Ed., Vol. VI. Suplemento a los contaminantes atmosféricos, su transformación, transporte y efectos. AC Stern, ed., Págs. 248-333. Academic Press, Nueva York, NY.

Krupa, S, MT McGrath, C Andersen, FL Booker, KO Burkey, A Chappelka, B Chevone, E Pell, B Zilinskas. 2001. Ozono ambiental y sanidad vegetal. Enfermedad de las plantas 85: 4-17.

Matyssek, RH Sandermann, G Wieser, FL Booker, S Cieslik, R Musselman, D Ernst. 2008. El desafío de hacer que la evaluación del riesgo de ozono para los árboles forestales sea más mecanicista. Contaminación ambiental 156: 567-582.


Técnicas utilizadas en biología molecular

Algunas de las técnicas más importantes utilizadas en biología molecular son las siguientes:

Las técnicas de Biología Molecular incluyen la caracterización, aislamiento y manipulación de los componentes moleculares de células y organismos.

Estos componentes incluyen el ADN, el depósito de información genética ARN, la parte funcional y estructural del aparato de traducción y las proteínas, el principal tipo de molécula estructural y enzimática en las células.

Una de las técnicas más básicas de la biología molecular para estudiar la función de las proteínas es la clonación de expresión.

En esta técnica, el ADN que codifica una proteína de interés se clona (usando PGR y / o enzimas de restricción) en un plásmido (conocido como vector de expresión).

Este plásmido puede tener elementos promotores especiales para impulsar la producción de la proteína de interés y también puede tener marcadores de resistencia a antibióticos para ayudar a seguir el plásmido.

( ii ) Reacción en cadena de la polimerasa:

La reacción en cadena de la polimerasa es una técnica extremadamente versátil para copiar ADN. La PCR permite copiar una sola secuencia de ADN (millones de veces) o modificarla de formas predeterminadas. PGR tiene muchas variaciones, como PGR de transcripción inversa (RT-PGR) para la amplificación de ARN y, más recientemente, PGR en tiempo real (QPGR) que permite la medición cuantitativa de j moléculas de ADN o ARN.

(iii) Electroforesis en gel:

La electroforesis en gel es una de las principales herramientas de la biología molecular. El principio básico es que el ADN, el ARN y las proteínas pueden separarse mediante un campo eléctrico. En la electroforesis en gel de agarosa, el ADN y el ARN se pueden separar en función del tamaño pasando el ADN a través de un gel de agarosa. Las proteínas se pueden separar en función del tamaño utilizando gel SDS-PAGE (poliacrilamida).

(iv) Transferencia y sondeo de macromoléculas Southern Blots:

El Southern blot es un método para probar la presencia de una secuencia de ADN específica dentro de una muestra de ADN. Estas herramientas se utilizan ampliamente en los laboratorios forenses para identificar a las personas que han dejado sangre u otro material que contenga ADN en la escena de los delitos. El número de bandas que se hibridan con una sonda corta da una estimación del número de genes estrechamente relacionados en un organismo.

La transferencia Northern se utiliza para estudiar los patrones de expresión de un tipo específico de molécula de ARN como comparación relativa entre un conjunto de diferentes muestras de ARN. Los ARN de la transferencia pueden detectarse hibrizándolos con una sonda marcada. Las intensidades de la banda revelan las cantidades relativas de ARN específico en cada muestra.

Inmunotransferencias (Western Blots):

Las proteínas se pueden detectar y cuantificar en mezclas complejas utilizando inmunotransferencias (o transferencias de Western).Las proteínas se someten a electroforesis, luego se transfieren a una membrana y las proteínas de la transferencia se sondean con anticuerpos específicos que pueden detectarse con anticuerpos o proteínas secundarios marcados.

(v) micromatriz de ADN:

Una matriz de ADN es una colección de puntos adheridos a un soporte sólido, como un portaobjetos de microscopio, donde cada punto contiene uno o más fragmentos de oligonucleótidos de ADN monocatenarios. Las matrices permiten colocar una gran cantidad de puntos muy pequeños (100 micrómetros de diámetro) en una sola diapositiva. Cada mancha tiene una molécula de fragmento de ADN que es complementaria a una única secuencia de ADN (similar a la transferencia Southern).

Una variación de esta técnica permite calificar la expresión génica de un organismo en una etapa particular de desarrollo (perfil de expresión).

(vi) Tecnologías anticuadas:

En biología molecular, los procedimientos y tecnologías se desarrollan continuamente y las tecnologías más antiguas se abandonan. Por ejemplo, antes del advenimiento de la electroforesis en gel de ADN (agarosa o poliacrilainida), el tamaño de las moléculas de ADN se determinaba típicamente mediante la velocidad de sedimentación en gradientes de sacarosa, una técnica lenta y laboriosa que requería instrumentación costosa antes de los gradientes de sacarosa, se utilizaba la viscosimetría.


Sistema filogenético de clasificación de plantas | Botánica

Lista de seis eminentes botánicos que contribuyeron al sistema filogenético de clasificación de plantas: 1. Adolf Engler (1844-1930) 2. John Hutchinson (1884-1972) 3. Armen Takhtajan (1911) 4. Arthur Cronquist (1919-1992) 5. Rolf Dahlgren (1932-1987) 6. Robert F. Thorne (1920).

Botánico # 1. Adolf Engler (1844-1930):

El sistema filo y tímido más conocido y ampliamente aceptado es el de Adolf Engler, profesor de botánica de la Universidad de Berlín. En 1892, publicó un sistema de clasificación basado principalmente en August Wilhelm Eichler en el libro & # 8216Syllabus der Vorlesungen & # 8217 como guía para estudiar las plantas disponibles en el Jardín Botánico de Breslau.

Durante 1887-1915, Engler y su asociado Karl Prantl realizaron un trabajo monográfico, el & # 8220Die naturlichen Pflanzenfamilien & # 8221 en 20 volúmenes, incluyendo todos los géneros conocidos de plantas desde las algas hasta las fanerógamas junto con la clave para identificar las plantas.

Engler, en colaboración con Gilg, y más tarde con Diels, publicó las obras en un solo volumen & # 8216Syllabus der Pflanzenfamilien & # 8217. Después de su muerte, el libro fue revisado por seguidores en varias ediciones y la última (12a) en 2 volúmenes en 1954 y 1964.

El sistema de Engler se ha utilizado ampliamente en los continentes americano y europeo. Engler dividió el reino vegetal en thir & shyteen (13) Divisiones.

La decimotercera (13) División es el Embryo & shyphyta Siphonogama (las plantas portadoras de semillas, es decir, Spermatophyta). Se divide en dos subdivisiones, gimnospermas y angiospermas. Las angiospermas se dividen en dos clases: monocotiledóneas y dicotiledóneas. La Clase Monocotyledonae se divide directamente en 11 Órdenes.

Por otro lado, la clase Dicotyledonae se divide en dos subclases: Archichlamydeae, es decir, dicotiledóneas inferiores, y Metachlamydeae o Sympetalae, es decir, dicotiledóneas superiores. El Archichlamydeae se divide a su vez en 33 Órdenes y Metachlamydeae en 11 Órdenes. Las Órdenes se dividen en Subórdenes, Familias, Géneros y finalmente en Especies.

En este sistema, Plant Kingdom contiene 309 familias. La clase Monocotyledonae comienza con la familia Typhaceae y termina en Orchidaceae, mientras que la clase Dicotyledonae comienza con la familia Casuarinaceae y termina en Compositae.

En este sistema, Engler consideró que en Embryophyta Siphonogama la flor sin perianto es la primitiva. Por lo tanto, plantas como el roble, el sauce, etc., con tallo leñoso y flores apétalous uni y tímidas (Amentiferae), se tratan como dicotiledóneas primitivas.

Las principales características distintivas de Engler & # 8217s sys & shytem que lo separan del sistema de Bentham y Hooker & # 8217s son:

1. Las Polypetalae y Monochlamydeae de Bentham y Hooker son amalgamas y tímidas y colocadas en un solo grupo (Subclases) Archichlamydeae.

2. Las familias de las plantas con flores se disponen en orden ascendente con la complejidad creciente de las flores (principalmente en envoltura floral).

3. Las monocotiledóneas se colocan antes que las dicotiledóneas.

4. El término Orden natural ha sido reemplazado por Familia.

5. El término Serie o Cohorte ha sido reemplazado por Orden.

Méritos y deméritos:

1. Todo el Reino Vegetal fue tratado ampliamente con excelentes ilustraciones, y se hizo la disposición filogenética de muchos grupos de plantas.

2. La fusión de Polypetalae y Monochlamydeae en Archichlamy & shydeae está justificada.

3. La consideración y colocación de Orchidaceae al final de Monocotyledons y Compositae al final de Dicoty & shyledons están justificadas, ya que son las más evolucionadas.

4. Juncaceae, Amaryllidaceae e Iridaceae se colocan juiciosamente más cerca de Liliaceae.

1. La colocación de Amentiferae y Centrospermae casi al comienzo de Dicotyledones, incluso antes de Ranales, no está justificada.

2. La reunión de todos los miembros simétanos y tímidos bajo Metachlamydeae aumentó la distancia de órdenes estrechamente relacionadas.

3. No es apropiado colocar las monocotiledóneas antes que las dicotiledóneas, porque generalmente se acepta que las monocotiledóneas han surgido a partir de dicotiledóneas y tímidas por reducción.

4. La colocación del pedido Helobiae entre los pedidos anticipados Pandanales y Glumiflorae es cuestionable. Araceae se colocó mucho antes que Liliaceae, de la que se deriva.

5. Las evidencias fósiles dieron poco apoyo a este sistema.

Botánico # 2. John Hutchinson (1884-1972):

John Hutchinson fue un botánico británico asociado con Royal Botanic Gardens, Kew, Inglaterra. Desarrolló y propuso su sistema basado en Bentham y Hooker y también en Bessey. Su sistema filogenético apareció por primera vez como & # 8220 Las familias de plantas con flores & # 8221 en dos volúmenes.

El primer volumen contiene Dicotyledons (publicado en 1926) y el segundo volumen contiene Monocotyledons (publicado en 1934). Hizo varias revisiones en diferentes años. La revisión final de & # 8220 The Families of Flowering Plants & # 8221 se realizó justo antes de su muerte el 2 de septiembre de 1972 y la tercera, es decir, la edición final, se publicó en 1973.

Hutchinson adoptó los siguientes principios para clasificar las plantas con flores:

1. La evolución tiene lugar tanto en dirección ascendente como descendente.

2. Durante la evolución, no todos los órganos evolucionan al mismo tiempo.

3. Generalmente, la evolución ha sido consistente.

4. Los árboles y arbustos son más primitivos que las hierbas en un grupo como género o familia.

5. Los árboles y arbustos son más primitivos que los trepadores.

6. Las plantas perennes son más antiguas que las anuales y bienales.

7. Las angiospermas terrestres son primitivas que las acuáticas.

8. Las plantas dicotiledóneas son primitivas que las plantas monocotiledóneas.

9. La disposición en espiral de los miembros vegetativos y florales es más primitiva que la disposición cíclica y los timidos.

10. Normalmente, las hojas simples son más primitivas que las compuestas.

11. Las plantas bisexuales son primitivas que las plantas unisexuales y las plantas monoicas son primitivas que las plantas dioicas.

12. Las flores solitarias son primitivas que las flores en inflorescencia.

13. Los tipos de estivación evolucionaron gradualmente desde contorsionados hasta imbricados y valvulados.

14. Las flores poliméricas preceden a las oligómeras.

15. Las flores polipétaloas son más primitivas que las flores gamopetalous.

16. Las flores con pétalos son más primitivas que las flores apétalas.

17. Las flores actinomorfas son más primitivas que las zigomorfas.

18. La hipoginia se considera más primitiva a partir de la cual evolucionaron gradualmente la periginia y la epiginia.

19. El pistilo apocarposo es más primitivo que el pistilo sincarpo.

20. La policarpia es más primitiva que el gineceo con pocos carpelos.

21. Las flores con muchos estambres son primitivas que las flores con pocos estambres.

22. Las flores con anteras separadas son primitivas que las flores con anteras fusionadas y / fila y timidez.

23. Las semillas endospérmicas con embriones pequeños son primitivas que las no endospérmicas con un embrión grande.

24. Los frutos individuales son primitivos que los frutos agregados.

Dividió el Phylum Angiospermae en dos Subphyla Dicotyledones y Monocotyledones. Las dicotiledóneas se dividen en dos divisiones: Lignosae (arbórea) y Herbaceae (herbácea).

La Lignosae incluye, fundamentalmente, los representantes leñosos derivados de Magnoliales y Herbaceae incluye la mayoría de las familias predominantemente herbáceas y tímidas derivadas de Ranales. El subfilo Monocotyledones se divide en tres divisiones: Calyciferae, Corolliferae y Glumiflorae.

1. La división Lignosae se dividió en 54 órdenes comenzando con Magnoliales y terminando en Verbenales.

2. La división Herbaceae se dividió en 28 órdenes comenzando con Ranales y terminando en Lamiales.

3. La división Calyciferae se dividió en 12 órdenes comenzando con Butamales y terminando en Zingiberales.

4. La división Corolliferae se dividió en 14 órdenes comenzando con Liliales y terminando en Orchidales.

5. La división Glumiflorae se dividió en 3 órdenes comenzando con Juncales y terminando en Graminales.

Entonces, en el último sistema de Hutchinson, las dicotiledóneas constan de 83 órdenes y 349 familias y las monocotiledóneas consta de 29 órdenes y 69 familias.

Méritos y deméritos Méritos:

1. Hutchinson propuso el origen monofilético de las angiospermas de algunas proangiospermas hipo y tímidas que tienen características de Bennettitale.

2. Hizo una valiosa contribución en la clasificación filogenética por su cuidado y estudios tímidos y críticos.

3. Las monocotiledóneas se derivan de las dicotiledóneas.

4. Según él, las definiciones de órdenes y familias son en su mayoría precisas, particularmente en el caso del subfilo Monocotyledones.

1. Hay una fragmentación indebida de familias y tímidos.

2. Se pone demasiado énfasis en el hábito y el hábitat. Por lo tanto, se cree que la creación de Lignosae y Herbaceae es un defecto que refleja la visión aristotélica.

3. El origen de las angiospermas a partir de un ancestro similar a Bennettitale es criticado por muchos, porque las estructuras anatómicas de las primeras dicotiledóneas no son sostenibles con tal ancestro.

Botánico # 3. Armen Takhtajan (1911):

Takhtajan era un paleobotánico reputado del Instituto Botánico Komarov de Leningrado, U.R.S.S. (ahora en Rusia). También hizo grandes contribuciones en el campo de la taxo y shynomy de las angiospermas. En 1942, propuso un arreglo filo y tímido preliminar de los órdenes de plantas superiores, basado en los tipos estructurales de gineceo y placentación.

Después de 12 años, es decir, en 1954, el sistema real de clasificación se publicó en & # 8220 El origen de las plantas angiospermas & # 8221 en idioma ruso. Fue traducido al inglés en 1958. Posteriormente, en 1964, propuso un nuevo sys & shytem en idioma ruso. Para rastrear la evolución de las angiospermas, se inspiró particularmente en el intento de Hallier de desarrollar una clasificación evolutiva sintética de las plantas con flores basada en la filosofía darwiniana.

La clasificación fue publicada en & # 8216Flowering Plants: Origin and Dispersal & # 8217 (1969) en idioma inglés. Más tarde, en 1980, se publicó una nueva revisión de su sistema en & # 8220Botanical Review & # 8221.

Takhtajan (1980) incluyó las plantas angiospérmicas en la División Magnoliophyta. La Magnoliophyta se divide en dos clases Magnoliopsida (Dicotyledons) y Liliopsida (Monocotyledons). La clase Magnoliopsida consta de 7 subclases, 20 superórdenes, 71 órdenes y 333 familias.

Por otro lado, Liliopsida se compone de 3 subclases, 8 superórdenes, 21 órdenes y 77 familias. La clase Magnoliopsida comienza con el orden Magnoliales y termina en Asterales y la clase Liliopsida comienza con Alismatales y termina en Arales.

Se considera que la clase Magnoliopsida es de origen monofilético, probablemente derivada de antepasados ​​similares a los de Bennettitales o de estirpes ancestrales a ellos. Por otro lado, se ha considerado que las Liliopsida tienen su origen en las cepas ancestrales de las ninfas. Consideraba a Magnoliopsida más primitiva que la Liliopsida. Los principios adoptados por Takhtajan (1980) para interpretar los linajes evolutivos en plantas superiores se mencionan en la Tabla 4.2.

1. La clasificación de Takhtajan es más filogenética que la de los primeros sys & shytems.

2. Esta clasificación coincide en general con los principales sistemas contemporáneos de Cronquist, Dahlgren, Thorne y otros. Se adoptaron tanto información filogenética como fenética para la delimitación de órdenes y familias.

3. Debido a la abolición de varios grupos artificiales como Polypetalae, Gamopetalae, Lignosae, Herbaceae, muchos taxones naturales se acercaron, a saber. Las Lamiaceae (antes colocadas bajo Herbaceae) y Verbenaceae (colocadas bajo Lignosae) se agrupan bajo el orden Lamiales.

4. La nomenclatura adoptada en este sistema está de acuerdo con el ICBN, incluso a nivel de división.

5. El tratamiento de Magnoliidae como grupo primitivo y la colocación de Dicotyledons antes que Monocotyledons están de acuerdo con los otros sistemas contemporáneos.

6. Se considera lógica la derivación de las monocotiledóneas del grupo hipotético terrestre extinto de Magnoliidae.

1. En este sistema, se le da más peso a la información cladística en comparación con la información fenética.

2. Este sistema proporciona clasificación solo hasta el nivel familiar, por lo que no es adecuado para la identificación y adopción en Herbaria. Además, no se ha proporcionado ninguna clave para la identificación de taxones.

3. Takhtajan reconoció a las angiospermas como una división que en realidad merecen un rango de clase como el de los sistemas de Dahlgren (1983) y Throne (2003).

4. En 1997 se crearon numerosas familias monotípicas debido a la mayor división y aumento del número de familias a 592 (533 en 1987), lo que dio lugar a una circunscripción muy estrecha.

5. Takhtajan sugirió incorrectamente que las familias más pequeñas son más & # 8220naturales & # 8221.

6. Aunque las familias Winteraceae y Canellaceae mostraron su relación de 99-100% mediante análisis multigénicos, Takhtajan clasificó estas dos familias en dos órdenes separados.

Botánico # 4. Arthur Cronquist (1919-1992):

Arthur Cronquist fue el curador principal del Jardín Botánico de Nueva York y profesor adjunto de la Universidad de Columbia. Presentó una interpretación elaborada y tímida de su concepto de clasificación en & # 8220 The Evolution and Classification of Flowering Plants & # 8221 (1968). La siguiente edición de su clasificación se publicó en & # 8220An Integrated System of Classification of Flowering Plants & # 8221 (1981).

La última revisión se publicó en la segunda edición en 1988 en & # 8220 The Evolution and Classification of Flowering Plants & # 8221. Discutió una amplia gama de características importantes para el sistema filogenético. También proporcionó claves sinópticas diseñadas para colocar los taxones en una alineación adecuada.

También representó su clasificación en gráficos para mostrar las relaciones de los órdenes dentro de las diversas subclases. Su sistema es más o menos paralelo al sistema de Takhtajan & # 8217, pero difiere en los detalles.

Consideró que las pteridospermas, es decir, las semillas de helechos como probables antepasados ​​de las angiospermas.

Los siguientes principios fueron adoptados por Cronquist (1981) para clasificar las plantas con flores:

1. Las primeras angiospermas fueron arbustos en lugar de árboles.

2. La hoja simple es primitiva que la hoja compuesta.

3. La venación reticulada es primitiva que la venación paralela.

4. Los estomas paracíticos son primitivos que los otros tipos.

5. Las traqueidas largas, delgadas y alargadas con numerosas fosas escalariformes son primitivas. Una mayor especialización conduce a vasos anchos más cortos con paredes algo más delgadas y paredes extremas transversales con pocas perforaciones más grandes. Posteriormente, la perforación se vuelve única y grande.

6. Elementos de tamiz largos y delgados con paredes extremas muy oblicuas donde las áreas de tamiz esparcidas a lo largo de la pared longitudinal con grupos de poros diminutos son primitivas. Considerando que, el floema con elementos de tubo de tamiz corto donde las paredes de los extremos tienen una sola placa de tamiz transversal con grandes aberturas es una condición derivada.

7. El área y la actividad del cambium y también la longitud de la inicial fusiforme está más en forma primitiva que gradualmente se reduce en una avanzada.

8. Las plantas con haces vasculares dispuestos en un anillo son primitivas en lugar de haces vasculares y tímidos dispersos como los que se encuentran en las monocotiledóneas.

9. Las plantas con flores grandes y terminales son primitivas, las que pueden disponerse en monochasia o dicasia y el otro tipo de inflores y timícencias se han derivado de estos tipos.

10. Flores con muchos pétalos grandes, libres y dispuestos en espiral, muchos estambres lineales y dispuestos en espiral y carpelos libres como los que se encuentran en Magnoliaceae son primitivos, y otros tipos evolucionaron a través de la reducción gradual, agregación, elaboración y diferenciación de miembros florales.

11. Las plantas con flores unisexuales se desarrollan a partir de antepasados ​​florales bisexuales.

12. El número grande e indefinido de miembros florales es primitivo que el número pequeño y definido.

13. El androceo con muchos estambres es primitivo que los números reducidos.

14. Los estambres lineales con sacos de polen incrustados que se encuentran en algunos géneros magnolios se consideran más primitivos que los demás.

15. Los granos de polen uniaperturados se consideran primitivos y los de tipo triaperturados se derivan de ellos.

16. Las plantas polinizadas por insectos se consideran primitivas a partir de las cuales evolucionaron las plantas polinizadas por el viento.

17. Se considera primitivo el gineceo formado por muchos carpelos dispuestos en espiral sobre un receptáculo más o menos alargado y tímido. Una mayor evolución conduce a la reducción del número de carpelos que están dispuestos en un solo verticilo y luego se someten a una mayor fusión.

18. La placentación axial es primitiva a partir de la cual se han desarrollado otros tipos.

19. El óvulo antropógeno es primitivo a partir del cual se han desarrollado otros tipos.

20. El óvulo con dos tegumentos (bitegmia) es primitivo y, ya sea por fusión o por aborto, ha evolucionado la condición unitégmica.

21. El saco embrionario con 8 núcleos (tipo Polygonum) es primitivo del que se ha derivado el saco embrionario con 4 núcleos (tipo Oenothera) por reducción.

22. Las monocotiledóneas se han desarrollado a partir de dicotiledóneas mediante el aborto de un cotiledón.

23. El folículo (fruto) se considera primitivo. Además, la fruta seca y dehiscente es más primitiva que la fruta carnosa e indehiscente.

De acuerdo con él & # 8220 muchas de las tendencias evolutivas tienen poca relación aparente con el valor de supervivencia y que hay algunas reversiones & # 8221.

En 1981, dividió la División Magnoliophyta (Angiospermas) en dos clases Magnoliatae (Dicotyledons) y Liliatae (Monocotyledons). Dividió Magnoliatae en 6 subclases y 55 órdenes, de los cuales magnoliales es el primitivo y Asterales es el taxón avanzado.

Por otro lado, la clase Liliatae se ha dividido en 4 subclases y 18 órdenes, de los cuales Alismatales es el primitivo y Orchidales es el taxón avanzado.La clase Magnoliatae consta de 291 familias y Liliatae con 61 familias.

Méritos y deméritos:

1. Existe un acuerdo general del sistema de Cronquist con el de otros sistemas contemporáneos como Takhtajan, Dahlgren y Thorne.

2. En la revisión de la clasificación en 1981 y 1988 se presentó información detallada sobre anatomía, fitoquímica de ultraestructura y cromo y shysome, además de morfología.

3. El sistema es altamente filogenético.

4. La nomenclatura está de acuerdo con el ICBN.

5. La familia Asteraceae en Dicotyledons y Orchidaceae en Monocotyledons generalmente se considera avanzada y se ubica correctamente hacia el final de los respectivos grupos.

6. Las relaciones de los diferentes grupos se han descrito con diagramas que proporcionan información valiosa sobre el avance relativo y el tamaño de las diversas subclases.

7. La familia Winteraceae (madera sin vasija presente similar a las pteridospermas) colocada al comienzo de las dicotiledóneas es favorecida por muchos autores.

8. La subclase Magnoliidae se considera el grupo más primitivo de dicotiledóneas. La ubicación de las dicotiledóneas antes que las monocotiledóneas encuentra acuerdos generales con los autores modernos.

9. Como el texto está en inglés, el sistema se ha adoptado fácilmente en diferentes libros.

1. Aunque es altamente filogenético y popular en los EE. UU., Este sistema no es muy útil y es tímido para la identificación y adopción en Herbaria, ya que no se proporcionan claves con sangría para los géneros.

2. Dahlgren (1983, 89) y Thorne (1980, 83) trataron las angiospermas en el rango de una clase y no en el de una división.

3. El superorden como un rango por encima del orden no se ha reconocido aquí, aunque está presente en otras clasificaciones contemporáneas como Takhtajan, Thorne y Dahlgren.

4. La subclase Asteridae representa un ensamblaje suelto de varias familias simétalas diversas.

5. Ehrendorfer (1983) señaló que la subclase Hamamelidae no representa una rama lateral antigua de la subclase Magnoliidae, sino que es un remanente de una transición de Magnoliidae a Dilleniidae, Rosidae y Asteridae.

6. Existe una diferencia de opinión con otros autores con respecto a la posición sistemática de algunas órdenes como Typhales, Arales, Urticales, etc.

Botánico # 5. Rolf Dahlgren (1932-1987):

Rolf Dahlgren, que trabaja en el Museo Botánico de la Universidad de Copenhague, Dinamarca, publicó un nuevo método en danés en 1974 para ilustrar un sistema de angiospermas en un libro de texto sobre taxonomía de angiospermas. Posteriormente en 1975 publicó & # 8220Un sistema de clasificación de angiospermas que se utilizará para demostrar la distribución de características & # 8221 en Botanische Notiser en inglés.

La versión revisada y mejorada de su sistema apareció gradualmente en los años siguientes:

I. En 1980 en & # 8220Botanical Journal of the Linnean Society & # 8221.

ii. En 1981, en & # 8220Phytochemistry and angio & shysperm Phytogeny & # 8221 (Editado por Young y Siegier).

iii. En 1983, en & # 8220Nordiac Journal of Botany & # 8221.

En su sistema, incluyó la información en diferentes niveles tanto como fue posible. En su clasificación, usó ampliamente las características químicas. Consideró las siguientes características morfológicas y químicas en su clasificación.

1. Características morfológicas:

I. Cloripetalae y Sympetalae.

ii. Condición apocarposa, sincarposa y monocarpelada.

iii. Tipos de microsporogénesis.

iv. Grano de polen bi y trinucleado.

v. Tenuinucellate, pseudocrassinucellate y crassinucellate.

vi. Óvulos bi o unitegmic, etc.

2. Características químicas:

I. Alcaloides de bencilisoquinolina.

ii. Alcaloides de pirrolisidina.

v. Ácido elágico y elagitaninos

vi. Varios grupos de flavonoides, etc.

No consideraba que las angiospermas se originaran polifiléticamente a partir de diferentes gimnospermas y shyspermas, pero creía que la combinación de diferentes características como el saco embrionario de 8 núcleos, el endospermo secundario, etc. difícilmente habría evolucionado independientemente de los diferentes grupos de gimnospermas.

Según Dahlgren (1980), la clase Magnoliopsida (Angiospermas) se ha dividido en dos subclases, Magnoliidae y Liliidae. Magnoliidae incluye 24 Superórdenes, los que comienzan con Magnoliiflorae y terminan en Lamiflorae 80 órdenes, los que comienzan con Annonales y terminan en Lamiales y 346 familias.

Por otro lado, la subclase Liliidae incluye 7 Superórdenes, los que comienzan con Alismatiflorae y terminan en Areciflorae 26 órdenes, los que comienzan con Hydrocharitales y terminan en Pandanales y 92 familias.

Méritos y deméritos:

1. En la clasificación de Dahlgren se presentó información detallada sobre morfología, fitoquímica y embriología.

2. Este sistema es altamente filogenético donde las angiospermas se clasifican como una clase como otros sistemas recientes.

3. La disposición de los taxones en forma de diagrama de burbujas da una idea de la relación de superórdenes, órdenes e incluso familias.

4. El uso de superórdenes y las sufijasanas están de acuerdo con los otros sistemas modernos como los de Takhtajan, Thorne, etc.

1. Este sistema proporciona clasificación de angiospermas solo hasta el nivel familiar, por lo que no es adecuado para la identificación y adaptación en Herbaria.

2. Dahlgren clasificó las angiospermas en dicotiledóneas y monocotiledóneas, lo que muestra inconformidad con la clasificación reciente de APG II (2003) y Throne (2003).

3. Dahlgren colocó las monocotiledóneas entre dicotiledóneas, mientras que en la clasificación moderna las monocotiledóneas se ubican entre las angiospermas primitivas y tímidas y las eudicots.

4. Aunque las familias Winteraceae y Canellaceae mostraron su relación de 99-100% por análisis multigénico, Dahlgren colocó estas dos familias en dos órdenes separados.

Botánico # 6. Robert F. Thorne (1920-):

Robert F. Thorne, taxónomo estadounidense, asociado con el Jardín Botánico Rancho Santa Ana, California, EE. UU., Publicó inicialmente los principios de su clasificación en 1958 y 1963. Posteriormente, en 1968, publicó & # 8220Sinopsis de una clasificación supuestamente filogenética de las plantas de flujo y timidez & # 8221 en Aliso. Las revisiones posteriores se publicaron en 1974, 1976, 1981, 1983, 1992 y 2000. La versión electrónica de su clasificación se publicó en 1999 y finalmente se revisó en 2003.

Thorne hizo mucho hincapié en el enfoque fitoquímico. Además de lo anterior, también consideró muchos otros aspectos diferentes.

6. Relación huésped-parásito.

Creía que las angiospermas son monofiléticas.

En 1983, dividió la clase Angiospermae (Annonopsida) en dos subclases Dicotyledoneae (Annonidae) y Monocotyledoneae (Liliidae). Dicotyledoneae se divide en 19 superórdenes que comienzan con Annoniflorae y terminan en Asteriflorae 41 órdenes, que comienzan con Annonales y terminan en Asterales y 297 familias.

Por otro lado, Monocotyledoneae se divide en 9 superórdenes, que comienzan con Liliiflorae y terminan en Commeliniflorae 12 órdenes, que comienzan con Liliales y terminan en Zingiberales.

Por lo tanto, prefirió el nombre Annonopsida para las angiospermas, Annonidae para las dicotiledóneas, reemplazando Magnoliflorae por Annoniflorae y Magnoliales por Annonales. Sin embargo, abandonó estas nomenclaturas y adoptó los nombres convencionales Magnoliopsida, Magnoliidae y Magnoliales desde 1992.

Robert F. Thorne (1992) revisó su clasificación y timificación (& # 8220Classification and Geography of Flowering Plants & # 8221) y la publicó en Botanical Review. Siguió los arreglos de diferentes taxones en orden descendente, como subclases (-idae), superórdenes (-anae), órdenes (-ales), sub & shyorders (-inae), familias (-aceae), subfamilias (-oideae) y tribus. (-ineae). Él trató las plantas de flujo y temblor como Clase con una bifurcación inicial en dos Subclases, Magnoliidae (Dicots) y Liliidae (Monocots).

La subclase Magnoliidae se ha dividido en 19 superórdenes, 52 órdenes y la subclase Liliidae se ha dividido en 9 superórdenes, 24 órdenes. Magnoliidae comienza con el orden Magnoliales y termina en Lamiales, mientras que Liliidae comienza con Triuridales y termina en Restionales.

1. En la clasificación de Trono se presentó información detallada sobre sistemática molecular y quimiotaxonomía.

2. Este sistema es altamente filogenético donde las angiospermas se clasifican como una clase como las de otros sistemas recientes.

3. Los grupos tradicionales, dicotiledóneas y mono & shycots han sido abolidos y las angio & shysperms se dividen en 10 subclases que están de acuerdo con el pensamiento filogenético reciente.

4. Varios taxones estrechamente relacionados se colocan más cerca unos de otros, a saber. los órdenes Malvales, Urticales, Rhamnales y Euphorbiales se han incluido bajo el superorden Malviflorae.

1. Este sistema no tiene utilidad práctica para la identificación y adopción en Herbaria, porque no se proporcionan claves de identificación para géneros.

2. No se ha mencionado la posición sistemática de los cinco géneros, a saber, Emblingia, Guametela, Haptanthus, Heteranthia y Pteleocarpa.

3. La colocación de Asteridae antes que Lamiidae no está justificada.

4. La segregación de Grewiaceae de Tiliaceae es muy cuestionable, ya que en la clasificación APG reciente todos los miembros de Tiliaceae, Bombacaceae y Sterculiaceae se colocan bajo Malvaceae.


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